مطالعات فراساختاری و بافت شناسی برگ و ریشه گیاه کرچک (.Ricinus communis L) تحت تیمار نانولوله های کربن چند دیواره

زیست شناسی تکوینی

مقاله 1، دوره 10، شماره 2 - شماره پیاپی 38، خرداد 1397، صفحه 1-10   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

زهرا فتحی¹؛ رمضانعلی خاوری نژاد^{* 1}؛ هما محمودزاده آخرت²؛ طاهر نژاد ستاری³

¹دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ، گروه زیست شناسی، تهران، ایران.

²دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مشهد، گروه زیست شناسی، مشهد، ایران

³دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ، گروه زیست شناسی، تهران، ایران

چکیده

Ricinus communis L. متعلق به خانواده Euphorbiaceae ، یک گیاه دارویی بسیار مهم می باشد. نانولوله های کربنی به عنوان تنظیم کننده های رشد گیاه بوده و می توانند مورفولوژی و فیزیولوژی سلول گیاهی را تغییر دهند. نفوذ نانولوله های کربنی در سیستم گیاهی می تواند تغییراتی را در عملکرد متابولیکی بوجود آورد که منجر به افزایش تولید می شود. نتایج آزمایشاتXRD و نانوپارتیکل سایزر نشان داد که فاز اصلی، کربن است و اندازه آن حدود 35-300 نانومتر است. هدف از این پژوهش بررسی اثر تیمار نانو لوله کربنی (0 و 500 µg ml^(-1)) روی ویژگی های بافت شناسی و فراساختار گیاه کرچک می باشد. بدین منظور، مراحل رشد رویشی گیاه کرچک در شرایط گلخانه ای انجام شد. نمونه برداری از ریشه و برگ گیاه شاهد و تیمار در هنگام برداشت، انجام گردید. مراحل آماده سازی بافت انجام شد و نمونه ها جهت مطالعه با میکروسکپ الکترونی (TEM) روی گرید منتقل شدند. نتایج مطالعه فراساختار سلول ها، تجمع زیادی از نانولوله های کربنی چند جداره با طول های مختلف درون واکوئل و سیتوپلاسم را نشان داد که در سلول های برگ تجمع واکوئل ها، افزایش پلاستوگلبولی ها در استرومای کلروپلاست و تغییر شکل کلروپلاست ها از کروی به بیضی شکل مشاهده شد و در سلول های ریشه منجر به تخریب کریستاهای میتوکندری ها، تخریب غشاهای واکوئل و هسته و تا حدی کروماتین ها، تجمع واکوئل ها، ضخامت زیاد دیواره های سلول های اسکلرید و آوند چوبی و بافت مقاوم بالغ و کاملا نمو یافته نسبت به شاهد شدند.

کلیدواژه‌ها

فراساختار ریشه و برگ؛ گیاه کرچک؛ نانولوله های کربن چند جداره؛ TEM

سایر فایل های مرتبط با مقاله

Abstract-maghaleh-1.pdf

مراجع

[1]     Çaglayan, K., Serce, C., Barutcu, E., Kaya, K., Medina, V., Gazel, M., Soylu, S. and Caliskan, O. S.; Vadan R.; Dai L.; Luo M.; Ambikapathi R.; Lee E. H. And Olszyk D. 2008, Comparison by Sequence-Based and Electron Microscopic Analyses of Fig Mosaic Virus Isolates Obtained from Field and Experimentally Inoculated Fig Plants. Plant Disease, 94, 1448-1452.

[2]     Casey, A., Farrell, G.F., McNamara, M., Byrne, H.J. and Chambers, G. 2005, Interaction of Carbon Nanotubes with Sugar Complexes. Synthetic Metals, 153, 357-360.

[3]     Flores, D.; Chacón, R.; Alvarado, L.; Schmidt, A.; Alvarado, C. and Chaves, J. 2014, Effect of Using Two Different Types of Carbon Nanotubes for Blackberry (Rubus adenotrichos) in Vitro Plant Rooting, Growth and Histology, American Journal of Plant Sciences, 5, 3510-3518.

[4]     Gardea-Torresdey, J. L., Gomez, E., Peralta-Videa, J. R., Parsons, J. G., Troiani, H., and Jose-Yacaman, M. 2003, Alfalfa sprouts: a natural source for the synthesis of silver nanoparticles. Langmuir, 19(4), 1357-1361.

[5]     Hofinger H.; Melle-Franco M.; Gallo T.; Cantelli A.; Calvaresi M., Gomes J. A. N. F. And Zerbetto F. 2011, A Computational analysis of the insertion of carbon nanotubes in to cellular membranes, Biomaterials, 32: 7079- 7085.

[6]     Husen A. and  Siddiqi K. 2014, Carbon and fullerene nanomaterials in plant system. J Nanobiotechnol;12:16.

[7]     Kamil Ahmed M., Hussein Falah H., Halbus Ahmed F. and Bahnemann Detlef W. 2014 Preparation, Characterization and Photocatalytic Applications of MWCNTs/TiO₂ Composite, International Journal of Photoenergy, Volum 2014, ID 475713, 8page.

[8]     Khan, A. and Sanwal, M. 2015, Medicinal Importance of Ricinus communis (Arandi), International Journal of Current Trends in Pharmaceutical Research, 3(3): 868-941.

[9]     Khodakovskaya, M.; Dervishi, E.; Mahmood, M.; Xu, Y.; Li, Z.; Watanabe, F. and Biris, A. S. 2009, Carbon Nanotubes Are Able To Penetrate Plant Seed Coat and Dramatically Affect Seed Germination and Plant Growth, American Chemical Society, ARTICLE, 3 (10): 3221–3227, review.

[10] Khodakovskaya, M. V.; de Silva, K.; Biris, A. S.; Dervishi, E.and Villagarcia, H. 2012, Carbon Nanotubes Induce Growth Enhancement of Tobacco Cells, ACS Nano, 6 (3), pp 2128–2135.

[11] Lahiani,M. H.; Dervishi, E.; Chen, J.; Nima, Z.; Gaume, A.; Biris, A. S. and Khodakovskaya, M. V. 2013, Impact of Carbon Nanotube Exposure to Seeds of Valuable Crops, American Chemical Society, 5 (16): 7965–7973.

[12] Ma, X.; Geiser-Lee, J.; Deng, Y.; Kolmakov, A. 2010. Interactions between engineered nanoparticles (ENPs) and plants: Phytotoxicity, uptake and accumulation. Sci. Total Environ.,408: 3053–3061.

[13] Mani, U. ; Dhanasingh,S.; Arunachalam, R.; Paul, E.; Shanmugam, P.; Rose, C.; Baran Mandal, A. 2013, A Simple and Green Method for the Synthesis of Silver Nanoparticles Using  Ricinus Communis Leaf Extract, Progress in Nanotechnology and Nanomaterials, 2 ( 1): 21-25.

[14] Martínez-Ballest M C.; Zapata L.; Chalbi N. and Carvajal M. 2016, Multiwalled carbon nanotubes enter broccoli cells enhancing growth and water uptake of plants exposed to salinity, Journal of Nanobiotechnology,14: 42.

[15] Milne, W.I.; Teo, K.B.K.; Amaratunga, G.A.J.; Legagneux, P.; Gangloff, L.; Schnell, J.P.; Semet, V.; Binh, V.T.; Groening, O. 2004. Carbon nanotubes as field emission sources. J. Mater. Chem, 14, 933–943.

[16] Nel, A.; Xia, T.; Meng, H.; Wang, X.; Lin, S.; Ji, Z.; Zhang, H. 2013, Nanomaterial toxicity testing in the 21st century: Use of a predictive toxicological approach and high-throughput screening. Acc.Chem. Res., 46: 607–621.

[17] Pourkhaloee, A.; Haghighi,M.; Saharkhiz, M. J.; Jouzi, H.and Doroodmand, M. M. 2011, Carbon nanotubes can promote seed germination via seed coat penetration. Journal of Seed Technology. 33 (2): 155-169.

[18] Pogodin S. And Baulin V. A. 2010, Can a carbon nanotube pierce through a phospholipid bilayer? , 1010-1462.

[19] Prakash, E.and Gupta, D.K. 2014, In Vitro Study of Extracts of Ricinus communis Linn on Human Cancer Cell lines,  Journal of Medical Sciences and Public Health, 2 (1): 15-20.

[20] Ray, M. 2010, The Effects of Single-Walled Carbon Nanotubes on Plant Growth, Electronic Theses and Dissertations.Paper 90.

[21] Srinivasan, C.; Saraswathi, R. 2010, Nanoagriculture—carbon nanotubes enhance  tomato seed germination and plant growth. Curr Sci 99:274–275.

[22] Tiwari, D. K.; Dasgupta-Schubert, N.; Villasen˜or Cendejas, L. M.; Villegas, J.; Carreto Montoya, L.; Borjas Garcı´a., S. E. 2014, Interfacing carbon nanotubes (CNT) with plants:enhancement of growth, water and ionic nutrient uptake in maize (Zea mays) and implications for nanoagriculture, Appl Nanosci, 4:577–591.

[23] Yuan H.; Hu S. H.; Huang P.; Song H.; Wang K.; Rruan J.; He R. And Cui D. 2011, Single walled carbon nanotubes exhibit dual-phase regulation to exposed Arabidopsis mesophyll cells. Nanoscale Research Letters, 6: 44-52.