اثر عصاره آبی الکلی زرشک زرافشانی (Berberis integerrima) بر میزان کشش پایه عضلات صاف نای ایزوله و تداخل اثر آن با سیستم ادرنرژیک

فصلنامه زیست شناسی جانوری

مقاله 2، دوره 11، شماره 3، خرداد 1398، صفحه 13-20   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

نویسندگان

محیاسادات افرازیان^* ؛ امین اله بهاء الدینی

گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران

چکیده

گیاهان به عنوان منابع دارویی در سیستم سلامت کشورهای مختلف جهان مورد استفاده قرار می گیرند. گیاه زرشک زرافشانی نیز دارای موادی از قبیل ویتامین c و پلی فنول می­باشد، و طبق مطالعات گذشته ویتامین c در برونکوکانستریکشن (انقباض عضلات نای) نقش دارد. پس بر آن شدیم تا اثر این عصاره را بر میزان کشش عضله نای بررسی نمائیم. با توجه به این که سیستم عصبی سمپاتیک در شل شدن عضلات نای نقش موثر دارد و مواد موجود در این گیاه نیز احتمالا این نقش را دارند، تداخل اثر عصاره را با سیستم ادرنرژیک نیز بررسی کردیم. چهارده سر موش صحرایی نر در اتاق حیوانات تحت شرایط نرمال نگهداری شدند. هر کدام با تزریق داخل صفاقی 2/1 گرم بر کیلوگرم یورتان بیهوش، نای به حلقه­های 3 میلی­متری تقسیم و در حمام بافتی (حاوی محلول کربس) قرار گرفتند. بافت‌ها به یک مبدل نیرو و آن به یک بریدج آمپلی فایر که عملکرد آن تقویت سیگنال بود، متصل، و داده­ها توسط سیستمی به نام پاورلب ثبت می‌شدند. در نهایت با استفاده از تست آماری  Independent-sample T test مقایسه شدند. دوز موثر عصاره 80 میلی­گرم بر کیلوگرم بدست آمد. این دوز به محیط بافت‌ها اضافه و پس از آن اپی نفرین و پروپرانولول به ترتیب اضافه شدند. کاهش معنی­داری در میزان کشش حلقه‌های نای در حضور عصاره نسبت به گروه کنترل مشاهده شد. این اثر حتی پس از اضافه شدن اپی نفرین به عنوان آگونیست سیستم آدرنرژیک و پروپرانولول به عنوان آنتاگونیست گیرنده β₂ ثابت بود. عصاره هیدروالکلی زرشک زرافشانی بر میزان کشش عضله صاف نای تاثیر گذاشته و باعث شل شدن آن گشته و این اثر با مسیر آدرنرژیک برهم‌کنش دارد اما احتمالاً این بر‌هم‌کنش از طریق گیرنده‌های ₂β نمی‌باشد

کلیدواژه‌ها

سیستم آدرنرژیک؛ نای ایزوله؛ زرشک زرافشانی؛ عضلات صاف

مراجع

1. Ashraf H., Heidari R., Nejati V., Ilkhanipoor M., 2013. Aqueous extract of Berberis integerrima root improves renal dysfunction in streptozotocin induced diabetic rats. Avicenna Journal of phytomedicine, 3(1): 82-90.

2. Ashraf H., Heidari R., Nejati V., 2014. Antihyperglycemic and Antihyperlipidemic Effects of Fruit Aqueous Extract of Berberis integerrima Bge. in Streptozotocin-induced Diabetic Rats. Iranian Journal of Pharmaceutical Research, 13(4): 1313-1318.

3. Barnes P.J., 1992. Modulation of neurotransmission in airways. Physiological Reviews, 2(3): 699-729.

4. Casassa L.F., Harbertson J.F., 2014. Extraction, evolution, and sensory impact of phenolic compounds during red wine maceration. Annual Review of Food Science and Technology, 5: 83-109.

5. Dawson W., West G.B., 1965. The Influence of Ascorbic Acid on Histamin Metabolism in Guinea-Pigs. British Journal of Pharmacology and Chemotherapy, 24: 725-734.

6. Franova S., Nosalova G., Pechanova O., Sutovska M., 2007. Red wine polyphenolic compounds inhibit tracheal smooth muscle contraction during allergen-induced hyperreactivity of the airways. The Journal of Pharmacy and Pharmacology, 59(5): 727-732.

7. Hemila H., 2014. The effect of vitamin C on bronchoconstriction and respiratory symptoms caused by exercise: a review and statistical analysis. Allergy, asthma, and clinical immunology. Official Journal of the Canadian Society of Allergy and Clinical Immunology, 10(1): 58-65.

8. Hyde D.M., Hamid Q., Irvin C.G., 2009. Anatomy, pathology, and physiology of the tracheobronchial tree: emphasis on the distal airways. The Journal of Allergy and clinical Immunology, 124(6 Suppl): S72-S77.

9. Ichinose M., 1998. Airway autonomic nervous system dysfunction and asthma. Nihon Yakurigaku Zasshi,111(4):195-203.

10. Johnson M., 2006. Molecular mechanisms of beta (2)-adrenergic receptor function, response, and regulation. The Journal of Allergy and Clinical Immunology, 117(1): 18-24.

11. Khajoei Nasab F., Khosravi A.R., 2014. Ethnobotanical study of medicinal plants of Sirjan in Kerman Province, Iran. Journal of Ethnopharmacology, 154(1): 190-197.

12. Li F., De Godoy M., Rattan S., 2004. Role of adenylate and guanylate cyclases in beta1-, beta2-, and beta3-adrenoceptor-mediated relaxation of internal anal sphincter smooth muscle. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 308(3): 1111-1120.

13. Nagatomo T., Koike K., 2000. Recent advances in structure, binding sites with ligands and pharmacological function of beta-adrenoceptors obtained by molecular biology and molecular modeling. Life Sciences, 66(25): 2419-2426.

14. Pozniakovskii V.M., Golub O.V., Popova D.G., Kovalevskaia I.N., 2003. The use of barberry berries in human nutrition. Voprosy Pitaniia,72(4): 46-49.

15. Proskocil B.J., Fryer A.D., 2005. Beta 2-agonist and anticholinergic drugs in the treatment of lung disease. Annals of the American Thoracic Society, 2(4): 305-310.

16. Sabahi Z., Farmani F., Soltani F., Moein M., 2018. DNA protection, antioxidant and xanthine oxidase inhibition activities of polyphenol-enriched fraction of Berberis integerrima Bunge fruits. Iranian Journal of Basic Medical Sciences, 21(4): 411-416.

17. Tanaka Y., Yamashita Y., Yamaki F., Horinouchi T., Shigenobu K., Koike K., 2003. MaxiK channel mediates beta2-adrenoceptor-activated relaxation to isoprenaline through cAMP-dependent and -independent mechanisms in guinea-pig tracheal smooth muscle. Journal of Smooth Muscle Research, 39(6): 205-219.

18. Torphy T.J., 1994. Beta-adrenoceptors, cAMP and airway smooth muscle relaxation: challenges to the dogma. Trends in Pharmacological Sciences, 15(10): 370-374.