وقوع بیماری سپتی‌سمی خونریزی دهنده ویروسی در مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان در سال های 1393 تا 1397 در استان‌های چهارمحال و بختیاری، لرستان و اصفهان

نشریه علمی میکروبیولوژی دامپزشکی

دوره 17، شماره 1 - شماره پیاپی 42، اسفند 1400، صفحه 49-61   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی (اصیل)

شناسه دیجیتال (DOI): 10.30495/jvm.2022.1936472.1182

نویسندگان

مهدی رئیسی^{* 1}؛ کیوان صادقیان²؛ اردشیر گنجی³؛ عبدالرسول نامجو⁴؛ مظاهر زمانی³؛ داریوش آزادیخواه⁵؛ مهران مهدی پور⁶

¹گروه بهداشت و بیماری‌های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران

²دانش آموخته کارشناسی ارشد شیلات، دانشکده کشاورزی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران.

³اداره کل دامپزشکی استان چهارمحال و بختیاری، ایران

⁴گروه آسیب شناسی، دانشکده دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران

⁵گروه بهداشت و بیماری‌های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران

⁶گروه بهداشت و بیماری‌های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، ایران

چکیده

سپتی‌سمی هموراژیک ویروسی از مهم‌ترین بیماری‌های عفونی در ماهیان پرورشی محسوب می‌شود، که وقوع آن به‌خصوص در قزل آلای رنگین کمان منجر به تلفات زیادی می‌گردد. هدف از انجام این مطالعه، بررسی وقوع و تغییرات بافتی بیماری فوق در استان‌های چهارمحال و بختیاری، لرستان و اصفهان از سال 1393 تا 1397 است. بر این اساس ماهیان قزل آلای مشکوک دارای علائم بیماری سپتی‌سمی هموراژیک ویروسی با استفاده از واکنش زنجیره‌ای پلی‌مراز مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج این مطالعه نشان داد که از مجموع 1515 نمونه بررسی شده، تعداد 202 نمونه (33/13 درصد) به ویروس فوق آلوده بودند. نتایج همچنین حاکی از آلودگی 65/14 درصد نمونه‌ها استان چهارمحال و بختیاری، 16/15 نمونه‌ها در استان لرستان و 5/8 درصد نمونه‌ها در استان اصفهان در طول 5 سال مطالعه است. میزان وقوع بیماری در اوزان مختلف ماهی نیز مورد بررسی قرار گرفت و بیشترین میزان وقوع بیماری در ماهیان با وزن بیش از 200 گرم (22/ 28 درصد) است. این میزان در ماهیان با وزن 200-50 گرم 44/19 درصد و در بچه ماهیان با وزن 50-1 گرم 6/8 درصد است. با توجه به این‌که بیماری در طول مطالعه در دامنه سالیانه حدودا 9 تا 19 درصد نوسان داشته است، کنترل قطعی بیماری نیازمند برنامه‌های مدون در راستای ریشه کنی است.

کلیدواژه‌ها

سپتی سمی خونریزی دهنده ویروسی؛ قزل آلای رنگین کمان؛ واکنش زنجیره‌ای پلی مراز

سایر فایل های مرتبط با مقاله

5-1182 pajoheshi.pdf

مراجع

 

1. Ahmadivand, S., Soltani, M., Mardani, K., Shokrpoor, S., Rahmati-Holasoo, H., Mokhtari, A., Hasanzadeh, R. (2016). Isolation and identification of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) from farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Iran. Acta Tropica, 156: 30-36.
2. Bain, M.B., Cornwell, E.R., Hope, K.M., Eckerlin, G.E., Casey, R.N., Groocock, G.H.,
   Getchell, R.G., Bowser, P.R., Winton, J.R., Batts, W.N., Cangelosi, A., Casey, J.W. (2010). Distribution of an invasive aquatic pathogen (Viral Hemorrhagic Septicemia Virus) in the Great Lakes and its relationship to shipping. PLos One, 5: e10156.
3. Bokaei S, Absalanfard K, Fallah Mehrabadi M, Ebrahimzadeh Mosavi H, Ghajari A, Shahbazian N. (2017). Investigation of Outbreaks of Viral Hemorrhagic Septicemia and Associated Risk Factors in Rainbow Trout Farms in Iran. Iranian Journal of Epidemiology, 13: 253-261[In Persian].
4. Brunson R., True, K. and Yancey, J. (1989). VHS virus isolated at Makah National Fish Hatchery. American Fisheries Society Fish Health Section Newsletter, 17: 3-4.
5. Cornwell, E,R,, Eckerlinm G.E., Getchell, R.G., Groocock, G.H., Thompson, T.M., Batts, W.N., Casey, R.N., Kurath, G., Winton, J.R., Bowser, P.R., Bain, M.B., Casey, J.W. (2011). Detection of viral hemorrhagic septicemia virus by quantitative reverse transcription polymerase chain reaction from two fish species at two sites in Lake Superior. Journal of Aquatic Animal Health. 23: 207-217.
6. Dale, O.B., Ørpetveit, I., Lyngstad, T. M., Kahns, S., Skall, H.F., Olesen, N.J. and Dannevig, B.H. (2009). Outbreak of Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) in seawater-farmed rainbow trout in Norway caused by VHS virus Genotype III. Diseases of Aquatic Organisms, 85: 93-103.
7. Deufel, J. (1959). Uber das Virus der infektiosen Nierenschwellung und Leberdegeneration und einige Bekampfungsversuche. Allgemeine Fischerei-Zeitung, 84: 269.
8. Escobar, L.E., Escobar-Dodero, J., Phelps, N.B.D. (2018). Infectious disease in fish: global risk of viral hemorrhagic septicemia virus. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 28: 637-655.
9. Eckerlin, G.E., Farrell, J.M., Casey, R.N., Hope, K.M., Groocock, G.H., Bowser. P.R. and Casey, J. (2011). Temporal Variation in Prevalence of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus Type IVb among Upper St. Lawrence River Smallmouth Bass. Transactions of the American Fisheries Society, 140: 529-536.
10. Fadaeifard F, Raissy M, Moumeni M, Faghani M. (2012). Evaluation of Infectious Hematopoietic Necrosis, Infectious Pancreatic Necrosis and Viral Hemorrhagic Septicemia Viruses in Iranian and Imported Rainbow Trout Eggs: Across Sectional Study. Journal of Veterinary Research, 67: 393-397 [In Persian].
11. Iran Fisheries Organization. (1398). Statistical YearbookofFisheries Organization, Tehran, Iran. 64 pages.
12. http://www.fao.org/state-of-fisheries-aquaculture/2018/en#:~:text=The%20most%20recent%20official%20statistics,million%20people%20engaged%20in%20fisheries (accessed on 24 December 2020).
13. Gharaguozlo M, Ghajari A, Abdi K, Seifouri P, Fallah Mehrabadi M, Shahbazian N. (2018). Study on clinical and gross pathology manifestation of Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) disease in cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Iran (2013-2015). Iranian Scientific Fisheries Journal, 26: 121-129. [In Persian].
14. Hakan Işıdan, H., Bolat, Y. (2011). A Survey of Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) in Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 11: 507-513.
15. Haghighi Khiabanian Asl, A. Bandehpour, M. Sharifnia, Z. Kazemi, B. (2008). Diagnosis of Viral Haemorrhagic Septicaemia (VHS) in Iranian rainbow trout aquaculture by pathology and molecular techniques. Bulletin- European Association of Fish Pathologists, 28: 170-175.
16. Hopper K. (1989). The isolation of VHSV from Chinook salmon at Glenwood Springs, Orcas Island, Washington. American Fisheries Society Fish Health Section Newsletter, 17: 1.
17. Isshiki, T., Nishizawa, T., Kobayashi, T., Nagano, T. and Miyazaki, T. (2001). An outbreak of VHSV (viral hemorrhagic septicemia virus) infection in farmed Japanese flounder Paralichthys olivaceus in Japan. Diseases of Aquatic Organisms, 47: 87-99.
18. Jensen, M.H. (1963). Preparation of fish tissue cultures for virus research. Bulletin de l’Office International des Epizooties, 59: 131-134.
19. Jimenez de la Fuente, J., Marcotegui, M.A., San Juan, M.L. and Basurco, B. (1988). Diagnosis of viral diseases in salmonid farms in Spain. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 8: 1-2.
20. Kaufman, J. and Holt, R.A. (2001). Isolation of North American viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) from Columbia River smelt (Thaleichthys pacificus). American Fisheries Society Fish Health Section Newsletter, 29: 1-3.
21. Kim, S.U., Lee, J.I., Hong, M.J., Park, H.S. and Park, S.I. (2003). Genetic relationship of the VHSV (viral hemorrhagic septicemia virus) isolated from cultured olive flounder, Paralichthys olivaceus in Korea. Fish Pathology, 16: 1-12.
22. Kocan, R.M., Hershberger, P.K., Elder, N.E. and Winton, J.R. (2001). Epidemiology of viral hemorrhagic septicemia among juvenile Pacific herring and Pacific sand lances in Puget Sound, Washington. Journal of Aquatic Animal Health, 13: 77-85.
23. Momeni H, Fadaeifard F, Momtaz H, and Momeni M. (2016). Nucleotide Sequencing and Phylogenetic Analysis of Glycoprotein Gene of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus (VHSV) Isolated From Rainbow Trout In Chaharmahal And Bakhtiary Province. Biological Journal of Microorganism. 5:1-10 [In Persian].
24. (2021). Accessible at https://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/aahc/current/chapitre_diseases_listed.pdf
25. Raissy M, Momtaz H, Ansari M, Moumeni M, and Hosseinifard M. (2010). Distribution of Infectious Pancreatic Necrosis Virus (IPNV) in two major rainbow trout fry producing provinces of Iran with respect to clinically infected farms. Journal of Food, Agriculture & Environment, 8: 614-615.