مقایسه تیمارهای سرمادهی، اسیدسولفوریک، خراش‌دهی، نیترات پتاسیم و هیدروپرایمینگ بر شاخص‌های جوانه‌زنی و فعالیت آنزیم آلفا آمیلاز بذر درختچه مورد (Myrtus communis L.)

تحقیقات بذر

دوره 11، شماره 40، آذر 1400، صفحه 47-61   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.30495/jsr.2022.1945704.1226

نویسندگان

زینب کیهان پور¹؛ محمدرضا صالحی سلمی^{* 2}

¹دانش آموخته گروه علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان

²دانشیار گروه علوم باغبانی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان

چکیده

مورد درختی است که در چند دهه اخیر کاربرد فراوانی در فضای سبز دارد. به منظور بررسی تیمارهای شکست خواب بذر مورد (Myrtus communis L.) پژوهشی در قالب طرح کامل تصادفی در 4 تکرار در سال 1394 در آزمایشگاه فیزیولوژی گیاهان باغی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان انجام شد. تیمارهای مورداستفاده در این آزمایش عبارت بودند از: شاهد، خراش‌دهی مکانیکی با استفاده از کاغذ سنباده به‌مدت 2 دقیقه، خیساندن در آب 4، 25، 50، درجه سانتی‌گراد به مدت زمان‌های 30، 60 و 90 دقیقه، استفاده از نیترات پتاسیم در غلظت‌های 100، 500، 1000 قسمت بر میلیون (ppm) با زمان غوطه‌وری به‌مدت 24 ساعت، استفاده از اسیدسولفوریک50 % در زمان‌های 5، 10، 20، 40 دقیقه و سپس 3 بار شستشو با آب مقطر، سرمادهی بذور مرطوب در دمای 4 درجه سانتی‌گراد با زمان‌های 10، 20، 40 روز. نتایج نشان داد با اعمال تیمار اسید سولفوریک 50 % به مدت 20 دقیقه بیشترین میزان جوانه‌زنی 25/64 درصد و بیشترین سرعت جوانه‌زنی به مقدار 8/12 عدد در روز و ) و بالاترین بنیه بذر (29/22 واحد) حاصل گردید. پس از این تیمار، تیمار خراش‌دهی می‌تواند به‌عنوان جایگزین استفاده گردد و نتایج به‌دست آمده از تیمار خراش‌دهی با سنباده به تقریب در جایگاه دوم قرار داشت. همچنین نتیج نشان داد برخی از تیمارها مانند اسید سولفوریک 50 % به مدت 40 دقیقه، نیترات پتاسیم با غلظت 1000 پی‌پی‌ام و خیساندن در آب 50 درجه سانتی‌گراد به مدت 90 دقیقه سبب آسیب رسانی به بذر و کاهش شاخص‌های جوانه‌زنی گردید.

کلیدواژه‌ها

ازدیاد؛ پوشش؛ خفتگی؛ خیساندن؛ هورمون

مراجع

Abdulghader, K., Nojavan, M. and Naghshbandi, N. 2008. Chemical stress induced by heliotrope (Heliotropium europaeum L.) allelochemicals and increased activity of antioxidant enzymes. Pakistan Journal of Biological Sciences, 11(6): 915-919.

Agrawal, R. 2003. Seed technology. Pub. Co. PVT. LTD. New Delhi. India.829 p.

Arooji, K., Khazaei, H.R., Rashid Mohasel, M.H., Victim, R., and Azizi, M. 2008. Investigation of the effects of sunflower allopathy (Helianthus annuus) on germination and growth of Amaranthus retroflexus and Chenopodium album. Journal of Plant Protection (Agricultural Science and Technology), 22(2): 128-120. (In Persian).

Jamalzadeh, M., Bazrafshan, F., Alizadeh, A., Zare, M., and Bahrani, A. 2018. Investigation of herbicides in different tillage systems on weeds and corn yield. Weed Research, 10 (2), 29-36.

Bahrani, A., and Hagh Joo, M. 2011. Response of some wheat (Triticum aestivum L.) genotypes to salinity at germination and early seedling growth stages. World Applied Sciences Journal,13(4): 887-897.

Bahrani, A. 2013. Effect of salinity on growth, ions distribution, accumulation and chlorophyll concentrations in two canola (Brassica napus L.) cultivars. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 13(5): 683-689.

Beizaee, S., Safipour, A., and Nematpour, F. 2015. Production of phenolic compounds in hairy roots culture of Radish (Raphanus sativus L.). Journal of Cellular and Molecular Researches (Iranian Journal of Biology), 28(3): 327-335. (In Persian).

Farhoudi, R., Makizadeh Tafti, M., and Safahani Langroudi, A. 2010. The effect of other detrimental effect of barley aqueous extract on germination and cell membrane destruction of wild oat and rye seedlings. Journal of Agricultural Research, 3: 32-25. (In Persian).

Haghjoo, M, and Bahrani, A. 2018. Effect of salicylic acid and gibberellic acid pre-treatment on accumulation of some ions and germination indices in canola (Brassica napus L.) under salt stress condition. Journal of Plant production Sciences. 8(1):23-35.

Hamawi M.H., Youssef M.M., and Zawam H.S. 2004. Management of Meloidogyne incognita,the root knot nematode, on soybean as affected by marigold and sea ambrosia (damsisa) plants. Journal of Pest Science, 77: 95-98.

Karami, S., Sabzalian, M.R., and Rahimmalek, M. 2018. Seed polyphenolic profile, antioxidative activity and fatty acids composition of wild and cultivated Carthamus species. Chemistry and Biodiversity, 15(6): 1700562.

Kohli, P.K., and Singh, D. 2001. Allelopathic impact of volatile components from Eucalyptus on crop plants. Biologia Plantarum, 33(6): 475- 483.

Maguire, J.D. 1962. Seed of germination – aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigour. Crop Science, 2: 176-177.

Miqani, F. 2003. Allelopathy from concept to application, Parto Vaghea Publications.

Mohammadi, F., Alireza Nejad, A., Mohammadi, A.M., and Elyas, T. 2012. Allelopathic effect of Eucalyptus leaf extract (Eucalyptus globules Labill) germination and seedling growth of Portulace oleracea L. Journal of Seed Science and Technology, 4: 57-63. (In Persian).

Mojab, M., and Mahmoudi S. 2008. Allopathic effects of aqueous extract of aerial and underground organs of Cardaria draba weed on germination and seedling growth characteristics of Sorghum bicolor L. Electronic Journal of Crop Production, 1(4): 78-65. (In Persian).

Mominul Islam, A.K.M., and Kato-Noguchi, H. 2012. Allelopathic potentiality of medicinal plant Leucas aspera. International Journal of Sustainable Agriculture, 4(1): 1-7

Najafi Ashtiani, A., Osareh, M.H., Baghestani, M.A., and Angji, J. 2008. Allopathic effect of shoots of Eucalyptus (Eucalyptus camaldulensis Dehnh.) on germination and seedling growth of Chenopodium album L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 24(3): 303- 293. (In Persian).

Parađiković, N., Vinković, T., Baličević, R., Tkalec, M., Ravlić, M., and Kokanović, A. 2013. Influence of planting spacing and harvesting time on the number, weight and diameter of marigold (Calendula officinalis L.) flowers. Agriculture, 19 (2): 23-28.

Qasem, J.R. 2002. Allelopathic effects of selected medicinal plants on Amaranthus retroflex and chenopodium murale. Allelopathy Journal, 10(2): 105-122.

Ruszkowski, D., Uniewicz, K., Auguścińska, E., and Janiszowski, W. 2004. The allelopathic properties of oleanolic acid 3-O-monoglucoside secreted by roots of Calendula officinalis to the soil. In: Second European Allelopathy Symposium, Pulawy, Poland, pp. 101.

Scott, S.J., Jones, R.A. and Williams, W.A. 1984. Review of data analysis methods for seed germination. Journal of Crop Science, 24: 1192-1199.

Tohidi, B., Rahimmalek, M., and Arzani, A. 2017. Essential oil composition, total phenolic, flavonoid contents, and antioxidant activity of Thymus species collected from different regions of Iran. Food Chemistry, 220: 153-161.

Turk, M.A., Lee, K.D., and Tawaha, A.M. 2005. Inhibitory effects of aqueous extracts of Black mustard on germination and growth of Radish. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences. 1(3): 227-231.

Wu H., Pratley, J., Lemerle, D., and Haig, T. 2001. Allelopathy in wheat (Triticum aestivum). Annual Applied Biolology, 139: 1-9

Zhang X., Liang, W., Kong, C., Jiang, Y., and Wang, P. 2005. Screening of allelopathic wheat varieties from Chinese germplasm collection. Proceeding of the 4th Word congress on Allelopathy, Wagga Wagga, Australia. 324-327.