بررسی اثر آسکوربات و نمک بر میزان سدیم، کلر وبر خی ترکیبات آلی در گیاه سویا

فیزیولوژی محیطی گیاهی

دوره 2، شماره 5، خرداد 1386، صفحه 24-32   

نوع مقاله: پژوهشی

نویسندگان

مریم نیاکان¹؛ آتنا دیانسایی²

¹گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد گرگان

²عضو باشگاه پژوهشگران جوان، دانشگاه آزاد گرگان

چکیده

استرس شوری یک فاکتور مهم محیطی است که رشد و تولید گیاه را محدود می‌کند. اثرات زیانبار شوری روی گیاهان یا به صورت مرگ گیاه و یا به صورت کاهش در رشد مشخص شده است.در طی تنش شوری انواع مختلفی از گونه‌های اکسیژن فعال (ROS) تولید می‌گردد. این رادیکال ها انرژی خود را به مولکول‌های زیستی داده و یا حتی با آنها وارد واکنش گشته و سبب تخریب آنها می‌گردند. در طی تنش شوری سیستم‌های حفاظتی تحت عنوان سیستم آنتی اکسیدانی فعال شده و سطوح ROS را در گیاه کنترل می‌کنند. یکی از این سیستم‌های حفاظتی، اسید آسکوربیک می‌باشد که نقش مهمی را در از بین بردن ROS در گیاهان بازی می‌کند. در این تحقیق گیاه سویا تحت تاثیر غلظت‌های مختلف آسکوربات (1و2 میلی‌مول) و نمک (50و150 میلی‌مول) قرار گرفت و اثر آنها بر میزان پرولین، گلیسین بتائین، ترکیبات فنلی، قندهای محلول، سدیم و کلر در دو بخش هوایی و زیر زمینی مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد که در حضور نمک میزان سدیم، کلر و نیز ترکیبات آلی فوق افزایش یافته، ولیکن با افزودن آسکوربات از مقدار آنها کاسته شد.

کلیدواژه‌ها

آسکوربات؛ تنظیم کننده‌های اسمزی؛ سویا؛ شوری

مراجع

Allakhverdiev, S.I., Sakamoto, A., Nishiyama, Y., Inaba, M., Murata, N., 2000b. Ionic and osmotic effects of NaCl-induced inactivation of photosystems I and II in Synechococcus sp. Plant Physiol. 123, 1047–1056.

Basara, A.S. and Basara, R.R. 1997. Mechanism of environmental stress resistance in plants. Harvard Academic publishers. P: 83-111

Bates, L.S., Waldren, R.P. and Treare, I. D. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies, Plant and Soil. 39: 205-207.

Benlloch, M., Ogeda, M.A. Ramos, J. and Rodriguesnavarro, A. 1994. Salt sensitivity and low discrimination between potassium and sodium in bean plants. Plant and Soil. 166: 117-123

Blokhina, O.B, Chirkova, T.V, Fagerstedt, K.V. 2001. Anoxic stress leads to hydrogen peroxide formation in plant cells. Journal of Experimental Botany 52: 1–12

Chance, B. and Maehly, C. 1955. Assay of catalase and peroxidase. methodes Enzymol. 11: 764-755

Chang, W.W.P, Huang, L, Shen, M, Webster, C, Burlingame, A.L, Roberts, J.K.M. 2000. Patterns of protein synthesis and tolerance of anoxia in root tips of maize seedlings acclimated to a low-oxygen environment, and identification of proteins by mass spectrometry. Plant Physiology 122: 295–317.

Chauhan, R.P.S., Chauban, C.P.S. and Kumar, D. 1980. Free proline accumulation in cereals in relation to salt tolerance. Plant and Soil. 57: 167-175

Chaves, M.M., Pereira, J.S., Maroco, J., Roderigues, M.L., Richardo, C.P.P., Osorio, M.L., Carvalho, I., Faria, T., and Pinheiro, C., 2002. How plants cope with water stress in the field. Photosynthesis and growth. Ann. Bot. 89, Pp. 907-916

Cramer. M.D, Schieholt, A. Weny Y.Z. and Lips, S.H. 1995. The influence of salinity on the utilization of real a plerotic carbon and nitrogen metabolism in tomato seedlings. J. Experimental Botany. 64(291): 1569-1577

Cushman, J.C., and Bohnert, H.J. 2000. Genomic approaches to plant stress tolerance. Curr. Opin. Plant Biol, 3: 117-124

Hagemann, M., Murata, N., 2003. Glucosylglycerol, a compatible solute, sustains cell division under salt stress. Plant Physiol. 131, 1628–1637.

Halliwell , B., Gutteridge, JMC.(1998). Iron and free radical reactions: two aspects of antioxidant protection.Trends Biochemical Science 11,375

Haro, R., Banuelous, M.A. Quintero, F.J. Rabio, F.and Rodrgez Navarro, A. 1993. Genetic basis of sodium exclusion and sodium tolerance in yeast. A model for plant. Plant Physiology. 89: 868-874

 Kawasaki, S., Borchert, C., Deyholos, M., Wang, H., Brazille, S., Kawai, K., Galbraith, D., Bohnert, H.J., 2001. Gene expression profiles during the initial phase of salt stress in rice. Plant Cell 13, 889–905

Kishor, P.B.K., Sangam, S., Amrutha, R.N., Lamix, P.S., Naidu, K.R. Rao, K.R., S.S., Rao, S., reddy, K.J., Theriappan, P. and V asulu, S. 2005. Regulation of proline biosynthesis, degradation, uptake and transport in higher plants: Its implication in plant growth and abiotic stress tolerance. Current science. Vol, 88, No, 3, Pp. 424-438.

Kochert, G. 1978. Carbohydrate determination by phenol sulfuric acid method in: Helebust, J. A. CRAIG, J. S. (ed): Hard book of method. 56-97.

Koroi, S.A.A. 1989. Gel elektrophores tische and spektral photometris choe unter zomein der temperature auf straktur and aktrits der amylase und peroxidase isoenzyme, physiol veg. 20: 15-23.

Matta, A.J. and Giai, I. 1969. Accumulation of phenol in tomato plant in effected by different forms of Fusarium oxysporum. planta. 50: 512-513.

Meloni, D.A., Gulotta, M.R., Martinez, C.A., and Oliva, M.A., 2004. The effect of salt stress on growth, Nitrate reductions and proline and glycinebetaine accumulation in Prosopis alba. Barz. J. Plant Physiol. Vol. 16, No. 1.

Mittler R. 2002. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends in Plant Science 7, 405–410

Naidu, B.P., Cameron, D.F., and Konduri, S. V., 2006. Improving drought tolerant of cotton by glycine betaine application and selection. The Australian agronomy  conference

Noctor, G., Foyer, C.H. 1998. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology 49: 249–279

Pattannagul, W., and Modare, M.A., 1999. Water dificit effects on raffinose family oligosaccharide metabolism in coleus. Plant Phisiology, Vol, 121, Pp. 987-993.

Rice-Evans, C.A., Miller, N.J., Paganga, G. 1997. Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends in Plant Sciences 2: 152–159

Wilson, C., Shannon, M.C. 1995. Salt-induced Na⁺/H⁺ antiport in root plasma membrane of a glycophytic species of tomato. Plant Science 107, 147–157

Yancey, P.H., 2005. Organic osmolyte as compatible metabolic and counteracting cytoprotectant in high osmolarity and other stresses. Journal of experimental biology, 208, 2819-2830

Zhifang, G., Loescher, W.H., 2003. Expression of a celery mannose 6-phosphate reductase in Arabidopsis thaliana enhances salt tolerance and induces biosynthesis of both mannitol and a glucosyl-mannitol dimmer. Plant Cell Environ. 26, 275–283.