تاثیر عوامل باکتریایی آنتاگونیست جدا شده از باغات پسته روی قارچ آسپرژیلوس فلاووس

فصلنامه علمی پژوهشی دنیای میکروب ها

مقاله 5، دوره 16، شماره2(پیاپی 55)، مرداد 1402، صفحه 143-155   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.30495/jmw.2023.1968442.2038

نویسندگان

سعیده دهقانپورفراشاه^{* 1}؛ مهرداد صالح زاده²

¹استادیار گروه کشاورزی دانشگاه پیام نور، تهران، ایران.

²شیراز- دانشگاه شیراز- دانشکده کشاورزی

چکیده

سابقه و هدف: آفلاتوکسین در پسته و انواع مواد غذایی سبب بروز مشکلات و بیماری در افراد می شود. گونه آسپرژیلوس فلاووس بهعنوان تولید کننده مهم آفلاتوکسین گزارش شده است. در این پژوهش عوامل باکتریایی آنتاگونیست از باغات پسته استان یزد جدا‌سازی و میزان خاصیت آنتاگونیستی آن ها روی قارچ آسپرژیلوس فلاووس بررسی شد.
مواد و روش ها: جدایه های مختلف باسیلوس و آسپرژیلوس از باغات پسته استان یزد جداسازی و گونه های آسپرژیلوس فلاووس شناسایی شدند. خصوصیات مختلف بیوشیمیایی و مولکولی جدایه های باکتریایی مورد بررسی قرار گرفت. همچنین خاصیت آنتی‌ بیوزی و تولید آنتی بیوتیک و تاثیر عصاره خارجسلولی، مواد فرار ضدقارچی و  سیدروفور جدایه ها روی آسپرژیلوس فلاووس ارزیابی شد.
یافته ها: بر اساس نتایج آزمون های بیوشیمیایی و مولکولی، همه جدایه ها از جنس باسیلوس تشخیص داده شدند. سویه Pr 3 با 95 درصد بیشترین تأثیر و سویه‌ های Pr 5 وPr 7  با 50 درصد کمترین تأثیر را روی آسپرژیلوس فلاووس داشتند. نتایج حاصل از آزمون تولید آنتی‌ بیوتیک بهروش کلروفرم نشان داد که جدایه هایPr3  وPr7  بهترتیب با 84/35 درصد و 38 درصد بیشترین و کمترین میزان تولید آنتی بیوتیک را داشتند. در این پژوهش، جدایه‌ های Pr1، Pr2، Pr3 و Pr9  بهصورت معناداری مایع خارجسلولی، سیدروفور و مواد فرار ضد قارچی تولید کردند و سطوح متفاوتی از تأثیر را روی آسپرژیلوس فلاووس نشان دادند.
نتیجه گیری: با توجه به نتایج به دست آمده از این پژوهش و یافته های سایر محققان، گونه های مختلف باسیلوس و متابولیت های آن‌ ها دارای خاصیت آنتاگونیستی بالایی روی قارچ آسپرژیلوس فلاووس پسته هستند که میتوانند به عنوان روشی با آینده روشن و موثر برای بازدارندگی رشد این قارچ و جلوگیری از تولید آفلاتوکسین بهکار روند.
 

کلیدواژه‌ها

آفلاتوکسین؛ آنتی بیوز؛ باسیلوس؛ متابولیت؛ سیدروفور

مراجع

References

1. Bagheri Marzooni B, Jahed Khaniki G, Shariatifar N, Molaee-Aghaee E. Assessment of aflatoxins in some pistachio cultivars supplied in bulk in Tehran food stores. Int J Environ Anal Chem. 2022; 17:1-10.
2. Cho HJ, Son SH, Chen W, Son YE, Lee I, Yu JH, Park HS. Regulation of Conidiogenesis in Aspergillus flavus. Cells. 2022;11(18):2796.
3. Sayadi M, Tajik H. Detoxification of aflatoxin b1 by Lactobacillus rhamnosus in a simulated model of the human digestive system. JMW. 2019; 11(4): 380-391.
4. Mojtahedi H, Danesh D, Haghighi B, Barnett R. Postharvest pathology and mycotoxin contamination of Iranian pistachio nuts. Phytopathology. 1978; 68(12): 1800-1804.
5. Younesi S, Salehzadeh M, Soleymani Pari MJ. Control of strawberry gray mold fungus with combined application of different species of Trichoderma and salicylic acid. JMW. 2023;16(1): 72-88.
6. Moyne AL, Shelby R, Cleveland TE, Tuzun SA. Bacillomycin D: an iturin with antifungal activity against Aspergillus flavus. J appl microbiol. 2001; 90(4): 622-629.
7. Pakizeh M, Nouri L, Azizi MH. Probiotic-Based Optimization of Pistachio Paste Production and Detoxification of Aflatoxin B1 Using Bifidobacterium lactis. J Food Qual. 2022: 1-31.
8. Koumoutsi A, Chen XH, Henne A, Liesegang H, Hitzeroth G, Franke P, Vater J, Borriss R. Structural and functional characterization of gene clusters directing nonribosomal synthesis of bioactive cyclic lipopeptides in Bacillus amyloliquefaciens strain FZB42. J Bacteriol. 2004; 186(4): 1084-1096.
9. Alberts JF, Engelbrecht Y, Steyn PS, Holzapfel WH, Van Zyl WH. Biological degradation of aflatoxin B1 by Rhodococcus erythropolis cultures. Int j food microbiol. 2006; 109(1-2): 121-126.
10. Zhu Y, Hassan YI, Lepp D, Shao S, Zhou T. Strategies and methodologies for developing microbial detoxification systems to mitigate mycotoxins. Toxins. 2017; 9(4): 130.
11. Sommartya, T . 1997. Peanut disease. Bangkok: kasetsart University publishing.
12. Liang-bin HU, Fei WA, Luo-gen CH, Zhi-qi SH. Identification of B-FS06 and the antagonistic activity of its cultural productions against Aspergillus flavus. Chin J Biol Control. 2007; 23(2): 160.
13. ONo M, KIMURA N. Antifungal peptides produced by Bacillus subtilis for the biological control of aflatoxin contamination. JSM Mycotoxins. 1991; 1991(34): 23-28.
14. 14. Choudhary AK. Influence of microbial co‐inhabitants on aflatoxin synthesis of Aspergillus flavus on maize kernels. Lett appl microbiol. 1992; 14(4): 143-147.
15. Cotty PJ. Virulence and cultural characteristics of two Aspergillus flavus strains pathogenic on cotton. Phytopathology. 1989; 79(7):808-814.
16. Diener UL, Davis ND. Aflatoxin production by isolates of Aspcrgillus flavus. Phytopathology. 1966;56(12):1390-3.
17. Dorner JW, Cole RJ, Connick WJ, Daigle DJ, McGuire MR, Shasha BS. Evaluation of biological control formulations to reduce aflatoxin contamination in peanuts. Biol Control. 2003; 26(3): 318-324.
18. McClenny N. Laboratory detection and identification of Aspergillus species by microscopic observation and culture: the traditional approach. Med mycol J. 2005; 43(Supplement_1): S125-128.
19. Samson RA, Visagie CM, Houbraken J, Hong SB, Hubka V, Klaassen CH, Perrone G, Seifert KA, Susca A, Tanney JB, Varga J. Phylogeny, identification and nomenclature of the genus Aspergillus. Stud mycol. 2005; 53(1): 1-27.
20. Palu AP, Gomes LM, Miguel MA, Balassiano IT, Queiroz ML, Freitas-Almeida AC, de Oliveira SS. Antimicrobial resistance in food and clinical Aeromonas isolates. Food microbiol. 2006; 23(5): 504-509.
21. Kiu R, Caim S, Alcon-Giner C, Belteki G, Clarke P, Pickard D, Dougan G, Hall LJ. Preterm infant-associated Clostridium tertium, Clostridium cadaveris, and Clostridium paraputrificum strains: genomic and evolutionary insights. Genome Biol Evol. 2017; 9(10): 2707-2714.
22. Weller DM, Cook RJ. Suppression of take-all of wheat by seed treatment with Pseudomonas fluorescent. Phytopathology. 1983; 73: 463-469.
23. Singh V, Deverall BJ. Bacillus subtilis as a control agent against fungal pathogens of citrus fruit. Trans Br Mycolo Soc. 1984; 83(3): 487-490.
24. Fiddaman PJ, Rossall S. The production of antifungal volatiles by Bacillus subtilis. J Appl Bacteriol. 1993; 74(2): 119-126.
25. Geels FP, Schippers B. Selection of antagonistic fluorescent Pseudomonas spp. and their root colonization and persistence following treatment of seed potatoes. J Phytopathol. 1983; 108(3‐4): 193-206.
26. Emmert EA, Handelsman J. Biocontrol of plant disease: a (Gram-) positive perspective. FEMS Microbiol lett. 1999; 171(1): 1-9.
27. Broadbent P, Baker KF, Waterworth Y. Bacteria and actinomycetes antogonistic to fungal root pathogens in Australian soils. Aust J Biol Sci. 1971; 24(4): 925-944.
28. Munimbazi C, Bullerman LB. Inhibition of aflatoxin production of Aspergillus parasiticus NRRL 2999 by Bacillus pumilus. Mycopathologia. 1997; 140(3): 163-169.
29. Bottone EJ, Peluso RW. Production by Bacillus pumilus (MSH) of an antifungal compound that is active against Mucoraceae and Aspergillus species: preliminary report. J Med Microbiol. 2003; 52(1): 69-74.
30. Chang PK, Hua SS. Nonaflatoxigenic Aspergillus flavus TX9-8 competitively prevents aflatoxin accumulation by A. flavus isolates of large and small sclerotial morphotypes. Int J Food Microbiol. 2007; 114(3): 275-279.
31. Reddy KR, Reddy CS, Muralidharan K. Potential of botanicals and biocontrol agents on growth and aflatoxin production by Aspergillus flavus infecting rice grains. Food control. 2009; 20(2): 173-178.
32. Farzaneh M, Ahmadzadeh M, Ghasempour A, Mir-Abolfathi M, Javan Nikkhah M, Sharifi-Tehrani A. Mode of Action of Bacillus subtilis on Aflatoxin Control of Aspergillus flavus. Iran J Plant Prot Sci. 2011; 42(2): 191-198.
33. Farzaneh M, Shi ZQ, Ghassempour A, Sedaghat N, Ahmadzadeh M, Mirabolfathy M, Javan-Nikkhah M. Aflatoxin B1 degradation by Bacillus subtilis UTBSP1 isolated from        pistachio nuts of Iran. Food control. 2012; 23(1): 100-106.
34. Chen G, Liao Z, Xu C, Liang Z, Liu T, Zhong Q, Wang L, Fang X, Wang J. Detoxification of Aflatoxin B1 by a Potential Probiotic Bacillus amyloliquefaciens WF2020. Front microbiol. 2022; 13.
35. Mohammadi A, Akhavan SA, Hosseinidoost R. Evaluation of antifungal activity of iturin producing Bacillus subtilis strains. JMW. 2016; 8(4): 299-307.
36. Ashrafi A, Salehzadeh M, Khezrinezhad N. Detection and identification of tomato wilt disease in East Azerbaijan province and controlling it using antagonist bacteria. Genetic Engineering and Biosafety Journal. 2020; 10 9(1): 28-39.