مقایسه سلولهای فیبروبلاست مشتق شده از جنین جوجه و بلدرچین بر اساس توانایی تکثیر و بقا

زیست شناسی تکوینی

مقاله 4، دوره 15، شماره 3 - شماره پیاپی 59، مرداد 1402، صفحه 35-40   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.30495/jdb.2023.1960635.1310

نویسندگان

الهام حویزی^{* 1}؛ علی آقائی²

¹گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران

²گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران

چکیده

سلول‌های بنیادی ماکیان مدل‌های درون آزمایشگاهی فوق العاده ای در آموزش‌های تکوینی و دارویی محسوب می‌شوند. این سلول‌ها دارای ظرفیت‌های بالایی در خودنوزایی و تمایز بوده و می‌توانند به‌ عنوان فناوری ارزشمندی در صنعت طیور مورد توجه قرار گیرند. هدف از این پژوهش استحصال، کشت و مقایسه سلول‌های فیبروبلاست جنین جوجه و بلدرچین با درنظر گرفتن زمان دوبرابر شدن تعداد سلولی (PDT) و میزان بقای سلولی در طول دوره‌های مختلف پاساژ بود. در این پژوهش تجربی، سلول‌های فیبروبلاست با روش هضم آنزیمی از تخم‌های لقاح یافته جدا و در محیط کشت DMEM محتوی 10درصد سرم FBS برای پاساژهای مختلف کشت شدند. زمان دو برابر شدن تعداد سلول‌ها و بقای سلولی با استفاده از رنگ‌آمیزی تریپان بلو و تستMTT بررسی گردید. داده‌ها نشان داد که هر دو نوع سلول در محیط کشت DMEM محتوی 10درصد سرم FBS و در دمای 38 درجه دارای حداکثر تکثیر بودند. براساس نتایج ما PDT برای هر دونوع سلول حدود 2±16 ساعت در طول پاساژهای اول تا سوم محاسبه گردید، اما در طی پاساژهای چهارم تا ششم PDT برای سلول‌های فیبروبلاست جوجه به 2±28 ساعت و برای سلول‌های فیبروبلاست بلدرچین 2±36 ساعت محاسبه گردید (p<0.05)؛ همچنین نتایج تست بقای سلولی مطابق با نتایج PDTبود. این پژوهش توانایی خودنوزایی و بقای سلول‌های فیبروبلاست بلدرچین به‌عنوان منبعی جدید از سلول‌های بنیادی ماکیان را توصیف می‌کند و استفاده ازین سلول‌ها در کاربردهای فناوردی در آینده را پیشنهاد می‌کند.

کلیدواژه‌ها

سلول‌های بنیادی ماکیان؛ سرعت رشد؛ بقای سلولی؛ بلدرچین

مراجع

• Tawk M, Vriz S. [Regeneration of vertebrate appendage: an old experimental model to study stem cells in the adult]. Med Sci (Paris). 2003; 19(4): 465-71.
• Hoveizi E, Ebrahimi‐Barough S. Embryonic stem cells differentiated into neuron‐like cells using SB431542 small molecule on nanofibrous PLA/CS/Wax scaffold. Journal of cellular physiology. 2019; 234(11): 1956-1973.
• Tolik D, Polawska E, Charuta A, Nowaczewski S, Cooper R. Characteristics of egg parts, chemical

 

composition and nutritive value of Japanese quail eggs--a review. Folia Biol (Krakow). 2014; 62(4): 287-92.

• Intarapat S, Stern CD. Chick stem cells: current progress and future prospects. Stem Cell Res. 2013;11(3): 1378-92.
• Farzaneh M, Hassani SN, Mozdziak P, Baharvand H. Avian embryos and related cell lines: A convenient platform for recombinant proteins and vaccine production. Biotechnology journal. 2017; 12(5).
• Abdolmaleki A, Zahri S. Comparison of toxicity and teratogenic effects of salen and vo-salen on chicken embryo. Drug Chem Toxicol. 2016; 39(3): 344-9. Epub 2015/12/25.
• Morin V, Veron N, Marcelle C. CRISPR/Cas9 in the Chicken Embryo. Methods Mol Biol. 2017; 1650: 113-23.
• Kwon MS, Koo BC, Kim D, Nam YH, Cui XS, Kim NH, et al. Generation of transgenic chickens expressing the human erythropoietin (hEPO) gene in an oviduct-specific manner: Production of transgenic chicken eggs containing human erythropoietin in egg whites. PloS one. 2018; 13(5): e0194721.
• Farzaneh M, Attari F, Mozdziak PE, Khoshnam SE. The evolution of chicken stem cell culture methods. Br Poult Sci. 2017; 58(6): 681-6.
• Davey MG, Balic A, Rainger J, Sang HM, McGrew MJ. Illuminating the chicken model through genetic modification. Int J Dev Biol. 2018; 62(1-2-3): 257-64.
• Shittu I, Zhu Z, Lu Y, Hutcheson JM, Stice SL, West FD, et al. Development, characterization and optimization of a new suspension chicken-induced pluripotent cell line for the production of Newcastle disease vaccine. Biologicals. 2016; 44(1): 24-32.
• Li Y, Ming F, Huang H, Guo K, Chen H, Jin M, et al. Proteome Response of Chicken Embryo Fibroblast Cells to Recombinant H5N1 Avian Influenza Viruses with Different Neuraminidase Stalk Lengths. Scientific reports. 2017; 7:40698.
• Vargas-Sanchez RD, Ibarra-Arias FJ, Torres-Martinez BDM, Sanchez-Escalante A, Torrescano-Urrutia GR. Use of natural ingredients in the Japanese quail diet and their effect on carcass and meat quality. Review. Asian-Australas J Anim Sci. 2019: 1641-56.
• Pramod RK, Lee BR, Kim YM, Lee HJ, Park YH, Ono T, et al. Isolation, Characterization, and In Vitro Culturing of Spermatogonial Stem Cells in Japanese Quail (Coturnix japonica). Stem cells and development. 2017;26(1):60-70.
• Sobhani A, Khanlarkhani N, Baazm M, Mohammadzadeh F, Najafi A, Mehdinejadiani S, et al. Multipotent Stem Cell and Current Application. Acta Med Iran. 2017; 55(1): 6-23.
• Wood SM, Wood JN. A chicken model for studying the emergence of invariant object recognition. Front Neural Circuits. 2015; 9:7.
• Zheng D, Wang X, Xu RH. Concise Review: One Stone for Multiple Birds: Generating Universally Compatible Human Embryonic Stem Cells. Stem Cells. 2016; 34(9): 2269-75.
• Farzaneh M, Attari F, Khoshnam SE, Mozdziak PE. The method of chicken whole embryo culture using the eggshell windowing, surrogate eggshell and ex ovo culture system. Br Poult Sci. 2018; 59(2): 240-4.