بررسی اثرات ضددردی و ضدالتهابی عصاره الکلی برگ اسفناج (Spinacia oleraceal) در موش کوچک آزمایشگاهی NMRI

فصلنامه زیست شناسی جانوری

مقاله 8، دوره 10، شماره 2 - شماره پیاپی 38، اسفند 1396، صفحه 81-90   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

نویسندگان

سمیه میرعزیزی¹؛ غلامحسن واعظی^{* 2}؛ علی حائری روحانی¹

¹گروه زیست‌شناسی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران

²گروه زیست‌شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران

چکیده

طبق تحقیقات انجام شده، عصاره اسفناج اثرات فارماکولوژیکی متنوعی از قبیل ضدالتهابی، آنتی‌اکسیدانی و ضداضطرابی دارد. مطالعه حاضر به بررسی اثر ضددردی و ضدالتهابی عصاره اتانولی برگ اسفناج در موش کوچک آزمایشگاهی نر بالغ با استفاده از آزمون فرمالین، صفحه داغ وآزمون زایلن می‌پردازد. در این پژوهش که روی 36  موش کوچک آزمایشگاهی نر بالغ نژاد NMRI با وزن 25 تا30 گرم انجام شد، حیوانات به طور تصادفی به 6 گروه 6تایی شامل: گروه کنترل (سالم)، گروه شاهد (دریافت‌کننده نرمال سالین) و همچنین سه گروه دریافت‌کننده دوزهای 150، 300 و 600 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن عصاره اتانولی برگ اسفناج وگروه استاندارد (دریافت‌کننده دگزامتازون با دوز 10  میلی‌گرم بر کیلوگرم یا مورفین با دوز 10  میلی‌گرم بر کیلوگرم) تقسیم شدند. پس از انجام تیمار حیوانات به وسیله آزمون فرمالین و هات پلیت از نظر واکنش به درد، مورد بررسی قرار گرفتند. همچنن فعالیت ضدالتهابی توسط آزمون زایلن یا التهاب گوش در حیوان بررسی گردید. تمامی داده‌ها از نظر آماری با استفاده از آنالیز واریانس یک‌طرفه و سپس آزمون توکی مقایسه و بررسی شدند. نتایج این مطالعه نشان داد که عصاره اتانولی برگ اسفناج موجب کاهش معنی‌دار درد در فاز مزمن تست فرمالین و تست صفحه داغ می‌شود. همچنین عصاره اتانولی برگ اسفناج درآزمون ادم گوش دارای فعالیت معنادار ضدالتهابی است. تحقیق حاضر نشان داد عصاره اتانولی برگ اسفناج دارای خواص ضددردی و ضدالتهابی در موش کوچک آزمایشگاهی است.

کلیدواژه‌ها

ضدالتهاب؛ ضددردی؛ عصاره الکلی برگ اسفناج؛ موش کوچک آزمایشگاهی

مراجع

1. Almeida R., Navarro D., Barbosa-Filho J., 2001. Plants with central analgesic activity. Phytomedicine, 8(4): 310-322.
2. Anjaneyulu M., Chopra K., 2003. Quercetin, a bioflavonoid, attenuates thermal hyperalgesia in a mouse model of diabetic neuropathic pain. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry, 27(6): 1001-1005.
3. Benavete-Garcia O., Castillo Marin F.R., Ortuno A., DeL Rio J.A.U., 2014. Sesand properties of citrus Flavonoids. Plant Foods for Human Nutrition, (59): 113-122.
4. Bergman M., varsharsky L.E., Gottieb H., Grossman S., 2001. The antioxidant activity of aqueous spinach extract: chemical identification of active fractions. Phytochemistry, (58): 143-152.
5. Calixto J.B., Cabrini D.A., Ferreia J., Campos M.M., 2000. Kinins in pain and inflammation. Pain, 87(1): 1-5.
6. Canterro G., Gampanella C., Mateos S., Cortes F., 2006. Topoisomerase II inhibition and high yield of endoreduplication induced by the Flavonoids Luteoline and quercetin. Mutagenesis, 21(5): 324-332.
7. Catrina M.J., 1991. The capsaicin receptor: a heat activated ion channel in the pain pathway. Nature, 66(53): 816-824.
8. Dubuisson D., Dennis S.G., 1977. The formalin test: a quantitative study of the analgesic effects of morphin, meperidine, and brain stem stimulation in rats and cats. Pain, 4(2): 161-174.
9. Garica M.D., Fernandez M.Z., Alvarez A., Saenz M.T., 2004. Antinociceptive and anti-inflammatory effect of the aqueous extract from leaves of Pimenta racemose varozua (Mirtaceae). Journal of Ethnopharmacology, 91(1): 69-73.
10. Hiruma-Lima C.A., Gracioso J.S., Bighetti E.J., Germonsen Robineou L., Souza Brito A.R., 2000. The juice of fresh leaves of Boerhaavia diffusa L. (Nyctaginaceae) markedly reduces pain in mice. Journal of Ethnopharmacpology, 71(1-2): 267-274.
11. Hirata H., Sonoda S., Agui S., Yoshida M., Ohinata K., Yoshikawa M., 2007. Rubiscolin-6, an opioid peptides derived from spinach Rubisco, has anxiolytic effect via activating and dopamine D₁ receptors. Division of Food Science and Biotechnology, 28: 1998-2003
12. Hunskaar S., Hole K., 1987. The formalin test in mice: dissociation between inflammatory and non–inflammatory pain. Pain, 30(1): 103-114.
13. Kawazu Okimura, Y.M., Ishii T., Yui S., 2003. Varietals and seasonal difference in oxalate content of spinach. Scientia Horticulture, 97: 203-210.

1. Kilpatric G.J., Smith T.W., 2005. Morphine-6-glueuronide, actions and mechanisms. Medical Research Review, 25(5): 521-544.
2. Law P., Loh H., Wei L.N., 2004. Insights into the receptor transcription and signaling: implications in opioid tolerance and dependence. Neuropharmacology, 47: 300-311.
3. Libert S., Chao Y., Chu X., Pletcher S.D., 2006. Trade-offs between longevity and pathogen resistance in Drosophila melanogaster are mediated by NFKB signaling. Aging Cell, 5(6): 533-543.
4. Paudel  K.R., Das B.P., Rauniar G., Sangraula H., Deo S., Bhattacharya S., 2007. Anti-nociceptive effect of amitriptyline in mice of acute pain models. Indian Journal of Experimental Biology, 45: 529-531.
5. Ramezani M., Naseri S., Yassa N., 2009. Antinociceptive and antinflammatory effects of isolated fraction from Apiumgraveolens seeds in mice. Pharmaceutical Biology, 47(8): 740-743.
6. Rosona Ramirez M., Guterres L., Dickel O.E., Castro M.R.D., Henriques A.T., Souzo M.M.D., Marti Barros D., 2010. Preliminary studies on the antinociceptive activity of Vaccinium ashei Berry in experimental animal models. Journal of Medicinal Food, 13(2): 336-342.
7. Rostom A., Dube C., lewin G., Testsvadze A., Barrowman N., Code C., 2007. Nonsteroidal anti-inflammatory drugs and cycloxygenase-2 inhibitors for primary prevention of colorectal cancer: a systematic review prepared for the U.S. Preventive Services Task Force. Annual of Internal Medicine, 146(5): 376-389.
8. Salunkhe D.K., Kadam S.S., 1998. Handbook of vegetable science and technology: production, composition, storage and processing. Marcel Dekker Inc., New York, 721 pp.
9. Samsam Shariat H., 2008. Extracting effective materials of medicinal plants and ways of identify and evaluation them. 2^nd ed., Tehran: Pub of Mani, p: 10-20.
10. Serpell M., 2006. Anatomy, physiology and pharmacology of pain. Surgery, 24(10): 350-53.
11. Sevostianova N., Danysz W., Bespalov A.Y., 2005. Analgesic effects of morphine and loperamide in the rat formalin test: Interactions with NMDA receptor antagonists. European Journal of Pharmacology, 525(1): 83-90.
12. Toker G., Kupeli E., Memisoglu M., Yesilada E., 2004. Flavonoids with antinociceptive and anti-inflammatory activities from the leaves of Tilia argentea (silver linden). Journal of Ethnopharmaco logy, 95(2-3): 393-397.
13. Walsh L.J., 2003. Mast cell and oral inflammation. Critical reviews in oral biology and medicine: an official publication of the American Association of Oral Biologists, 14(3): 188-198.
14. Yong S., Kawamura Y., Yoshikawa M., 2003. Effect of rubiscolin-6 delta opioid peptide derived from Rubisco on memory consolidation on. Peptides, (24): 325-328.
15. Zeashana H., Amresh G., Rao C.V., Singh S., 2009. Antinoceptive activity of Amaranthus spinosus in experimental animals. Journal of Ethnopharmacology, 122(3): 492-496.
16. Zhao H., Ohinata k., Yoshikawa M., 2008. Rubimetide (Met-Arg-Trp) derived from Rubisco exhibits anxidytic-like activity via the DPI receptor in male ddy mice. Peptides, 29(4): 629-632.