ارزیابی اثر طول روز بر شاخص‌های مورفولوژیک و فیزیولوژیک سبزفرش‌های چایر (Cynodon dactylon [L.] Pers.) و چمانواش بلند (Festuca arundinacea Schreb.) در شرایط مزرعه

فیزیولوژی محیطی گیاهی

مقاله 5، دوره 12، شماره 46، تیر 1396، صفحه 57-66   

نوع مقاله: پژوهشی

نویسندگان

نادر آدمی پور^* ؛ حسن صالحی؛ مرتضی خوشخوی

گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران.

چکیده

تخمین زده شده که 20 تا 25 درصد از تمام سبزفرش­ها (چمن­ها) تحت تاثیر سایه ناشی از ساختمان­ها یا درختان بلند، قرار می‌گیرند. بنابراین سایه از طریق اثر بر شدت، کیفیت و طول مدت تابش بر رشد گیاه اثر می­گذارد. با توجه به اهمیت سبزفرش­ها در زیبایی محیط پیرامون بشر تاکنون پژوهش­های کافی برای شناخت ویژگی­های مورفوفیزیولوژیک سبزفرش­ها در شرایط طول روز مختلف انجام نشده است. به همین منظور پژوهشی مزرعه­ای با هدف اثر طول روز بر برخی ویژگی­های مورفولوژیکی و فیزیولوژیکی دو جنس سبزفرش، به صورت طرح کرت­های خرد شده در قالب طرح بلوک­های کامل تصادفی با چهار تکرار در مزرعه پژوهشی دانشکده کشاورزی بخش علوم باغبانی دانشگاه شیراز انجام شد. طول روز در سه سطح (روز بلند (16 ساعت)، روز متوسط (12 ساعت) و روز کوتاه (8 ساعت)) به‌عنوان فاکتور اصلی و دو جنس سبزفرش (Festuca arundinacea Schreb. و .Cynodon dactylon [L.] Pers) به‌عنوان فاکتور فرعی در نظر گرفته شدند. نتایج نشان داد که روز کوتاه سبب کاهش تراکم پنجه، وزن تر و خشک شاخساره، وزن تر و خشک ریشه و محتوای کلروفیل و نشاسته و افزایش سطح برگ و فعالیت آنزیم­های سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز، پراکسیداز و آسکوربات پراکسیداز شد. همچنین نتایج نشان داد که روز بلند سبب افزایش تراکم پنجه، وزن تر و خشک شاخساره، وزن تر و خشک ریشه و محتوای کلروفیل و نشاسته و کاهش سطح برگ و فعالیت آنزیم­های سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز، پراکسیداز و آسکوربات پراکسیداز شد. سبزفرش Festuca arundinacea Schreb. در مقایسه با سبزفرش Cynodon dactylon [L.] Pers. مقاومت بیشتری به کاهش طول روز نشان داد. با توجه به امکان افزایش دوره روشنایی در پارک­ها و استادیوم­ها، در زمان­هایی که سبزفرش­ها در فصول سرد رنگ زرد به خود می­گیرند. افزایش دوره نوری سبب بهبود رنگ سبز و افزایش کارایی در سبزفرش­ها می­گردد.   
 

کلیدواژه‌ها

آنتی‌اکسیدان؛ سبزفرش؛ طول روز؛ کلروفیل

مراجع

 

 

Adamipour, N., Salehi, H. and Khosh-Khui, M. (2016). Morpho-physiological alteration in common bermudagrass [Cynodon dactylon (L.) Pers.] subjected to limited irrigation and light condition. Advances in Horticultural Science. 30: 141-149.

Baldwin, C.M., Liu, H. and McCarty, L.B. (2008).  Diversity of 42 bermudagrass cultivars in a reduced light environment.  Acta Horticulturae. 83: 147-158.

Bates, L.S., Waldern, R.P. and Teave, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress standies. Plant Soil.39: 205-107.

Beauchamp, C. and Fridovich, I. (1971). Superoxide dismutases: improved assays and an assay predictable to acrylamide gels. Analytical Biochemistry. 44: 276–287.

Burritt, D.J. and Mackenzie, S. (2003). Antioxidant metabolism during acclimation of Begonia erythrophylla to high light levels. Annals of Botany. 91: 783–794.

 

 

Chance, B. and Maehly, A.C. (1995). Assay of catalase and peroxidase. In: S.P. Culowic and N.O. Kaplan (eds). Methods in enzymology Vol. 2. Academic Press. Inc. New York. U.S.A. 764-765.

Choudhury, F.K., Rivero, R.M. Blumwald, E. and Mittler, R. (2017). Reactive oxygen species, abiotic stress and stress combination. The Plant Journal.  90: 856-867.

Dakah, A., Zaid, S. Suleiman, M. Abbas, S. and Wink, M. (2014). In vitro propagation of the medicinal plant Ziziphora tenuior L. and evaluation of its antioxidant activity. Saudi Journal of Biological Sciences. 21: 317-323.

Dhindsa, R.S., Plumb-Dhindsa, P. and Thorpe, T.A. (1981). Leaf senescence: correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation, and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. Environmental and Experimental Botany. 32: 93-101.

Dietz, K.J., Mittler, R. and Noctor, G. (2016). Recent progress in understanding the role of reactive oxygen species in plant cell signaling. Plant Physiology. 171: 1535-1539.

Dong, B., Deng, Y. Wang, H. Gao, R. Stephen, G.K. Chen, S. Jiang, J. and Chen, F. (2017). Gibberellic acid signaling is required to induce flowering of chrysanthemums grown under both short and long days. International Journal of  Molecular Sciences. 8: 23-59.

Esmaili, S. and Salehi, H. (2012). Effects of temperature and photoperiod on postponing bermudagrass (Cynodon dactylon [L.] Pers.) turf dormancy. Journal of  Plant Physiology. 169: 851-858.

Fry, J. and Huang, B. (2004). Applied turfgrass science and physiology. Journal Wiley. pp 320.

Ghasemi Ghehsareh, M. and Salehi, H. (2011). Applied turfgrass science and physiology. Esfehan. pp 370.

Gong, Y., Toivonen, P.M. Lau, O.L. and Wiersma, A.P. (2001). Antioxidant system level in "Braeburn" apple is related in its browning disorder. Botanical Bulletin of Academia Sinica. 42: 259-264.

Grace, S.C. and Logan, B.A. (1996). Acclimation of foliar antioxidant systems to growth irradiance in three broadleaved evergreen species. Plant Physiology. 112: 1631–1640.

Han, H., Gao, S.H. Li, B. Dong, X. Feng, H. and Meng, Q. (2009). Overexpression of violaxanthin de-epoxidase gene alleviates photoinhibition of PSII and PSI in tomato during high light and chilling stress. Journal of Plant Physiology. In Press.

Jiang, Y., Duncan, R.R. and Carrow, R.N. (2004). Assessment of low light tolerance of seashore paspalum and bermudagrass. Crop Science. 44: 587-594.

McCready, R.M., Guggolz, J. Silviera, V. and Owens, H.S. (1950). Determination of starch and amylase in hemocuprein. Journal of Biological Chemistry. 244: 6094-55.

Mengin, V., Pyl, E.T. Moraes, T.A. Sulpice, R. Krohn, N. Encke, B. and Stitt, M. (2017). Photosynthate partitioning to starch in Arabidopsis thaliana is insensitive to light intensity but sensitive to photoperiod due to a restriction on growth in the light in short photoperiods. Plant, Cell and Environment. In Press.

Nakano, Y. and Asada, K. (1981). Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts. Plant Cell Physiology. 22: 867–880.

Saini, R.S., Sharme, K.D., Dhankhar, O.P. and Kaushik, R.A. (2001). Laboratory manual of analytical techniques in horticulture. India: Agrobios. 10: 49–50.

Sinclair, T.R., Ray, J.D. Permazzi, L.M. and Mislevy, P. (2004). Photosynthetic photon flux density influences grass responses to extended photoperiod. Environmental and Experimental Botany. 51: 69-74.

Van Huylenbroeck, J.M. and Van Bockstaele, E. (2001). Effects of shading on photosynthetic capacity and growth of turf grass species. International Truf Society Research Journal. 9: 353-359.

Wang, Zh., Xu, Q. and Huang, B. (2004). Endogenous cytokinin level and growth responses to extended photoperiods for creeping bentgrass under heat stress. Crop Science. 44: 209-213.

Wherley, B. and Metzger, J.D.S. (2005). Tall fescue photomorphogenesis as influenced by changes in the spectral composition and light intensity. Crop Science. 45: 562-594.

Xu, Q. and Huang, B. (2004). Physiological responses to extended photoperiod under heat stress for creeping bentgrass. Journal of the American Society for Horticultural Science.  44: 209-214.

Xu, Y.F., Sun, X.L. Jin, J.W. and Zhou, H. (2010). Protective roles of nitric oxide on antioxidant systems in tall fescue leaves under high-light stress. African Journal of Biotechnology. 9: 300-306.

Yamori, W. and Shikanai, T. (2016). Physiological functions of cyclic electron transport around photosystem I in sustaining photosynthesis and plant growth. Annual Review of Plant Biology. 67: 81-106.