تایپینگ کاست کروموزومی SCCmec سویه‌های استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین جدا شده از سواب بینی کارکنان بیمارستان‌های لارستان

فصلنامه علمی پژوهشی دنیای میکروب ها

مقاله 3، دوره 11، شماره 1 (پیاپی 34)، خرداد 1397، صفحه 40-50   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

مهدی عبادی^{* 1}؛ طاهره خلیلی آزاد²

¹استادیار، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد لارستان، گروه میکروب شناسی

²کارشناس ارشد، دانشکده پزشکی لارستان، گروه آزمایشگاه

چکیده

سابقه و هدف: استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین یکی از مهم‌ترین عوامل عفونت‌های فرصت ‌طلب بیمارستانی و جامعه به شمار می‌رود. امروزه افزایش مقاومت به آنتی‌بیوتیک‌ ها موجب نگرانی جامعه پزشکی شده است. در این میان مقاومت به آنتی‌بیوتیک متی سیلین به دلیل محدود کردن درمان از اهمیت ویژه‌ای برخوردار است. مطالعه حاضر با هدف ردیابی ژن مقاومت به متی سیلین و بررسی ژنوتیپی کاست کروموزومی SCCmec در سویه‌های استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از بینی کارکنان و تعیین الگوی حساسیت آنتی‌بیوتیکی این باکتری انجام شد.

مواد و روش‌ها: در این مطالعه مقطعی-توصیفی 230 نمونه سواب بینی از کارکنان بیمارستان‌ های لارستان در سال 1394 جمع‌آوری گردید. شناسایی سویه‌های استافیلوکوکوس اورئوس با روش‌های استاندارد آزمایشگاهی انجام شد. در تمامی  جدایه ها، سنجش الگوی حساسیت آنتی‌بیوتیکی با روش انتشار دیسک،حداقل غلظت بازدارندگی با روش E-test و حساسیت به متی سیلین با روش آگار اسکرین انجام شد. همچنین حضور ژن مقاومت آنتی‌بیوتیک mecA و تایپنگ SCCmec با روش multiplex PCR مورد ارزیابی قرار گرفت.

یافته‌ها: از مجموع نمونه‌های مورد بررسی 37 مورد (14.8%) آلوده به باکتری استافیلوکوکوس اورئوس بودند. از بین جدایه ها، 28 سویه (75.7%)  دارای ژن مقاومت به متی سیلین بودند. از این بین 21 سویه (75%)  اکتساب از جامعه و 7 سویه (25%) اکتساب از بیمارستان داشتند. همچنین نتایج تایپینگ سویه‌های SCC  نشان داد که  تایپ I با فراوانی 32.1 درصد و به دنبال آن تایپ IV (28.6%)، تایپ II (17.9%)، تایپ V (14.3%) و تایپ III (7.1%) به ترتیب فراوان ترین جدایه ها بودند. بیشترین مقاومت آنتی‌بیوتیکی سویه‌ها مربوط به آنتی‌بیوتیک‌های پنی‌سیلین (100%) و اگزاسیلین (60%) و کمترین میزان مربوط به ونکومایسین (0%) بود. با تعیین حداقل غلظت بازدارندگی ونکومایسن، میزان مقاومت حد واسط به ونکومایسین 28/5% شناسایی گردید. همچنین با آزمون آگار اسکرین، مقاوت به اگزاسیلین 92.8 درصد  تشخیص داده شد.

نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد که میزان شیوع باکتری استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین بیش از 70 درصد است و بیشتر این جدایه ها کسب شده  از جامعه  بودند. این امر می‌تواند هشدار جدی در مورد ضرورت درمان عفونت ‌های ناشی از این باکتری و کنترل افراد ناقل در محیط بیمارستان را مطرح  نماید.

کلیدواژه‌ها

استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین؛ کاست کروموزومی؛ مقاومت آنتی بیوتیکی

مراجع

1. Davoodabadi F, Mobasherizadeh S, Mostafavizadeh K, Shojaei H, Havaei SA, Koushki AM,
   Moghadasizadeh Z, Meidani M, Shirani K. Nasal colonization in children with community
   acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Adv Biomed Res. 2016; 5: 86.
   
   2. Changchien CH, Chen SW, Chen YY, Chu C. Antibiotic susceptibility and genomic variations in
   Staphylococcus aureus associated with Skin and Soft Tissue Infection (SSTI) disease groups.
   BMC Infect Dis. 2016; 16(1): 276.
   3. Mustapha M, Bukar-Kolo YM, Geidam YA, Gulani IA. Phenotypic and genotypic detection of
   methicillin-resistant Staphylococcus aureus in hunting dogs in Maiduguri metropolitan, Borno
   State, Nigeria. Vet World. 2016; 9(5): 501-506.
   4. Iliyasu G, Daiyab FM, Tiamiyu AB, Abubakar S, Habib ZG, Sarki AM, Habib AG. Nosocomial
   infections and resistance pattern of common bacterial isolates in an intensive care unit of a
   tertiary hospital in Nigeria: A 4-year review. J Crit Care. 2016; 34: 116-120.
   5. Gunawardena ND, Thevanesam V, Kanakaratne N, Abeysekera D, Ekanayake A, Perera N.
   Molecular identification of methicillin resistance and virulence marker in Staphylococcus
   aureus. Sri Lankan J infect Dis. 2012; 2(2): 18-29.
   6. Shittu AO, Okon K, Adesida S, Oyedara O, Witte W, Strommenger B, Layer F, Nubel V.
   Antibiotic resistance and molecular epidemiology of Staphylococcus aureus in Nigera. BMC
   Microbial. 2011; 5(11): 92.
   7. Baba-Moussa L, Sina H, Scheftel JM, Moreau B, Sainte-Marie D. Staphylococcal
   panton-valentine leucocidin as a major virulence factor associated to furuncles. Plos One. 2011;
   6(10): 25716.
   8. Tsubakishita S, Kuwahara-Arai K, Sasaki T, Hiramatsu K. Origin and molecular evolution of the
   determinant of methicillin resistance in staphylococci. Antimicrob Agents Chemother. 2010;
   54(10): 4352-4359.
   9. Zamani A, Sadeghian S, Najafi Mosleh M, Goodarzi M T, Yousefi Mashouf R, Ghaderkhani J.
   Detection of methicillin-resistance gene (mec-A) in Staphylococcus aureus strains by PCR and
   determination of antibiotic sensitivity. Avicenna J Clin Med. 2007; 14(3): 54-58. [In Persian]
   10. Brown DFJ, Edwards DI, Hawkey PM, Morrison D, Ridgway GL, Towner KJ, Wren MW.
   Guidelinesfor the laboratory diagnosis and susceptibility testing of Methicillin-Resistant
   Staphylococcus aureus (MRSA). J Antimicrob Chemther. 2005; 56: 1000-1018.
   11. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing, 21st Informational
   Supplement, M100-S21, Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 2016.
   12. Havaei SA, Karbalaeizadeh Babaki M, Pishva E. Comparison of the results of polymerase
   chain reaction and oxacillin agar dilution methods in determining resistance to methicillin in
   isolated Staphyloccus aureus at Alzahra Hospital, Isfahan, Iran. J Isfahan Med Sch. 2011; 29
   (151): 1175-1182. [In Persian]
   13. Zhang K, Mcclure JA, Elsayed S, Louie T, Conly JM. Novel multiplex PCR for
   characterization and concomitant subtyping of Staphylococcal cassette chromosome mec typing
   I to V in Methicillin Resistant Staphylococcus aureuse. J Antimicrob Chemother. 2005; 43(10):
   5026-5033.
   14. Shokoohi Sh, Aminzadeh Z, Sharafi K, Askari E, Soleimani F. Prevalence of meticillin
   
   resistant in HA-MRSA in Tehran. Iran J Microbiol. 2009; 2(1): 87.
   15. Moise PA, Smyth DS, Robinson DA, El-Fawal N, McCalla C, Sakoulas G. Genotypic and
   phenotypic relationships among methicillin-resistant Staphylococcus aureus from three
   multicenter bacteremia studies. J Antimicrob Chemother. 2009; 63: 873-876.
   16. Hota B, Lyles R, Rim J, Popovich KJ, Rice T, Aroutcheva A, Wenstein R. Predictors of
   clinical virulence in community-onset methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections:
   the importance of USA300 and pneumonia. Clin Infect Dis. 2011; 53(8): 757-765.
   17. Adaleti R, Nakipoglu Y, Karahan ZC, Tasdemir C, Kaya F. Comparison of polymerase chain
   reaction and conventional methods in detecting methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J
   Infect Dev Ctries. 2008; 2(1): 46-50.
   18. Otter JA, French GL. Molecular epidemiology of community-associated meticillin-resistant
   Staphylococcus aureus in Europe. Lancet Infect Dis. 2010; 10(4): 227-239.
   19. Ghaznavi-Rad E, Nor Shamsudin M, Sekawi Z, van Belkum A, Neela V. A simplified
   multiplex PCR assay for fast and easy discrimination of globally distributed staphylococcal
   cassette chromosome mec types in methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J Med
   Microbiol. 2010; 59: 1135-1139.
   20. Zohorinia M, Soleymani E, Nobari H, Ahmadi k, Jafarian S, Bahmani N, Asadi A. Frequency
   of nasal and hand carriage of staphylococcus aureus among the medical and non medical staffs
   i I a ia ai o ce e’saat edical ce te . ilita y ealth Sci Res. 6; 4( ): -907.
   21. Novick RP, Christie GE, Penades JR. The phage-related chromosomal islands of
   Gram-positive bacteria. Nat Rev Microbial. 2010; 8(8): 541-551.
   22. Turlej A, Hryniewicz W, Empel J. Staphylococcal cassette chromosome mec (Sccmec)
   classification and typing methods: an overview. Pol J Microbiol. 2011; 60(2): 95-103.
   23. Perez LR, Dias C, Azevedo PA. Agar dilution and agar screen with oxacillin: what is known
   and what is unknown in detection of MRSA. J Med Microbiol. 2008; 57(8): 954-956.