شناسایی مولکولی آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم (Anaplasma phagocytophilum) در گاوها و گوسفندان استان گیلان

آسیب‌شناسی درمانگاهی دامپزشکی

مقاله 6، دوره 14، 3 (55) پاییز، آبان 1399، صفحه 263-283   

نوع مقاله: مقاله علمی پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.30495/jvcp.2020.1904886.1274

نویسندگان

نصرالله واحدی نوری^{* 1}؛ وحید نعمان²؛ ابراهیم رحیم ابادی³

¹استادیار بخش تحقیقات بیماری‌های انگلی، موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران.

²دانشیار بخش تحقیقات بیماری‌های انگلی، موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران.

³مربی بخش تحقیقات بیماری‌های انگلی، موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران.

چکیده

گونه آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم یکیاز باکتری‌های بیماری­زای نوپدید منتقله توسط کنه‌ها می‌باشد که باعث ایجاد بیماری مشترک بین انسان و بسیاری از حیوانات می‌گردد و به همین دلیل اهمیت آن در بهداشت عمومی جامعه قابل‌توجه می‌باشد. هدف از انجام مطالعه حاضر، شناسایی مولکولی گونه آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم در گاوها و گوسفندان استان گیلان بود. بدین منظور در طول سال 1397، تعداد 200 نمونه خون از طریق رگ وداج گاوها و 200 نمونه خون از طریق رگ وداج گوسفندان، به‌طور تصادفی از نقاط مختلف استان گیلان جمع‌آوری گردید. جهت آزمایش ­PCR (polymerase chain reaction)، در ابتدا DNA استخراجی از نمونه‌های خونی، با جفت آغازگری که قطعه 1468 جفت بازی از ژن 16S­rRNA جنس آناپلاسما را تکثیر می‌کند، تکثیر داده­شد. 70 نمونه‌ مثبت اولیه گاوی  با استفاده از روش nested-PCR از نظر وجود گونه آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم بررسی شدند و در نتیجه 66 نمونه (33 درصد)، مثبت تشخیص داده شد. همچنین 38 نمونه مثبت  اولیه گوسفندی با استفاده از روش nested-PCR، ازنظر وجود گونه آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم بررسی شدند که 10 نمونه (5 درصد)، از این نظرمثبت تشخیص داده شدند. تحلیل مقایسه­ای درصد فراوانی آلودگی به آناپلاسما­فاگوسیتوفیلوم گاوها و گوسفندان مورد آزمایش، در ارتباط با فصول مختلف سال، سنین مختلف، جنسیت دام، ارتفاع از سطح دریا، ناقلین و نوع دامداری (نیمه‌صنعتی- سنتی) هم نشان داد که فقط فراوانی گونه آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم در گوسفندان استان گیلان، بین دو نیمه اول و دوم سال دارای اختلاف آماری معنی‌دار بود (05/0 p < /em><). نتایج مطالعه نشان داد که آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم از گونه­های رایج آناپلاسما در بین دام­های استان گیلان می­باشد. با توجه به نقش آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم در بروز آناپلاسموزیس گرانولوسیتیک در انسان، این موضوع به لحاظ بهداشت عمومی حائز اهمیت می­باشد.  

کلیدواژه‌ها

آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم؛ شناسایی مولکولی؛ گاو؛ گوسفند؛ گیلان

مراجع

Ahmadi-Hamedani, M., Khaki, Z., Rahbari, S., Kazemi, B. and Bandehpour, M. (2009). Molecular identification of anaplasmosis in goats using a new PCR-RFLP method. Iranian Journal of Veterinary Research, 10(29): 367-372.

• ● Aktas, M. and Özübek, S. (2015). Bovine anaplasmosis in Turkey: First laboratory confirmed clinical cases caused by Anaplasma phagocytophilum. Veterinary Microbiology, 178(3-4): 246-251.
• ● Awad, H., Antunes, S., Galindo, R.C., do Rosario, V.E., de la Fuente, J., Domingos, A., et al. (2011) Prevalence and genetic diversity of Babesia and Anaplasma species in cattle in Sudan, Veterinary Parasitology, 181(2-4): ­146-152.
• ●Annen, K., Friedman, K., Eshoa, C., Horowitz, M., Gottschall, J. and Straus, T. (2012) Two cases of transfusion-transmitted Anaplasma phagocytophilum. American Journal of Clinical Pathology, 137(4): 562-565
• ● Barlough, J.E., Madigan, J.E., DeRock, E. and Bigornia, L. (1996). Nested polymerase chain reaction for detection of Ehrlichia equi genomic DNA in horses and ticks (Ixodes pacificus).­ Veterinary Parasitology, ­63(3-4): 319-329.
• ● Bashiribod, H, Kazemi, K., Eslami, G., Bigdeli, S., Bandehpour, M., Rahbarian, N., et al. (2004). First molecular detection of Anaplasma phagocytophilum in Ixodes ricinus ticks in Iran. Journal of Medical Sciences, 4(4): 282-286.
• ●Ben Said, M.B., Belkahia, H. and Messadi, L. (2018). Anaplasma spp. in North Africa: a review on molecular epidemiology, associated risk factors and genetic characteristics. Vector-borne and zoonotic diseases, 9(3): 543-555.
• ● de la Fuente, J., Estrada-Peña, A., Cabezas-Cruz, A. and Kocan, K.M. (2016). Anaplasma­phagocytophilum uses common strategies for infection of ticks and vertebrate hosts. Trends in Microbiology, 24(3): 173-180.
• ● de la Fuente, J., Naranjo, V., Ruiz- Fons, F., Hofle, U., Fernandez De Mera, I.G., Villanua, D., et ­al. (2005b). ­Potential vertebrate reservoir hosts and in vertebrate vectors of Anaplasma marginale and A. phagocytophilum in central Spain. Vector Borne Zoonotic Diseases, 5(4): 390-401.
• ● Eisawi, N., El Hussein, A., Hassan, D., Musa, A., Hussien, M., Enan, K­., et ­al. (2020) A molecular prevalence survey on Anaplasma infection among domestic ruminants in Khartoum State, Sudan. Tropical Animal Health and Production, 52(4): 1845-1852.
• ● Elhassan, A.M., Mansour, M.E.A., Shamon, A.A.A., and El Hussein, A.M. (2014) A Serological Survey of Akabane Virus Infection in Cattle in Sudan. ISRN. Veterinary Science, 2014: 123904.
• ●Gaowa Yoshikawa, Y., Ohashi, N., Wu, D., Kawamori, F., Ikegaya, A., Watanabe, T., et al. (2014). Anaplasma phagocytophilum antibodies in humans, Japan, 2010-2011. Emerging Infectious Diseases, 20(3): 508-509.
• ● Grøva, L., Olesen, I., Steinshamn, H. and Stuen, S. (2011). Prevalence of Anaplasma phagocytophilum infection and effect on lamb growth. Acta Veterinaria Scandinnavia, 53(1): 30.
• ● Hayder N.A., Yahia I.­K. and Qassim H.K. (2019). Molecular detection and phylogenetic analysis of Anaplasma spp in cattle in Al-Qadisiyah province of Iraq. Macedonian Veterinary Review, 42(2): 181-188.
• ● Hamzah, K.J. and Hasso, S.A. (2019). Molecular prevalence of Anaplasma phagocytophilum in sheep from Iraq. Open Veterinary Journal, 9(3): 238-245.
• ● Hanène, B., Mourad, B.S., Alberto, A., Khaoula, A.Z.I., Dorra, H., Mohamed, G., et ­al. (2015). First molecular survey and novel genetic variants’ identification of Anaplasma marginale, A.­centrale and A.­bovis in cattle from Tunisia. Infection, Genetics and Evolution, 34(1): 361-371.
• ● Hofmann-Lehmann, R., Meli, M.L., Dreher, U.M., Gonczi, E., Deplazes, P., Braun, U., et al. (2004). Concurrent infections with vector-borne pathogens associated with fatal hemolytic anemia in a cattle herd in Switzerland. ­Journal of Clinical Microbiology, 42(8): 3775-3780.
• ● Hosseini-Vasoukolaei, N., Oshaghi, M.A., Shayan, P., Vatandoost, H., Babama hmoudi, F., Yaghoobi -Ershadi, M.R., et al. (2014). Anaplasma Infection in ticks, livestock and human in Ghaemshahr, Mazandaran province, Iran. Iranian Journal of Arthropod Borne Disease, 8(2): 204-211.
• ● Hulínská, D., Langøová, K., Pejèoch, M., and Pavlásek, I. (2004). Detection of Anaplasma­phagocytophilum in animals by real-time polymerase chain reaction. Journal of Pathology, Microbiolgy and Immunology, 112(4-5): 239-247.
• ● Jalali, S.M., Khaki, Z., Kazemi, B., Bandehpour, M., Rahbari, S., Jalali M.R., et ­al. (2013). Molecular detection and identification of Anaplasma species in sheep from Ahvaz, Iran. Iranian Journal of Veterinary Research, 14(1): 50-56.
• ● Kiilerich, A.M., Christensen, H. and Thamsborg, S.M. (2009). Anaplasma phagocytophilum in Danish sheep: confirmation by DNA sequencing. Acta Veterinaria Scandinnavia, 51(1): 55.
• ● Kocan, K.M., de la Fuente, J., Guglielmone, A.A. and Melendez, R.D. (2003). Antigens and alternatives for control of   Anaplasma marginale infection in cattle. Clinical Microbiology Reviews, 16(4): 698-712.
• ● Laloy, E., Petit, E., Boulouis, H.J., Gandoin, C., Bouillin, C., Gounot, G., et al. (2009). Dynamics of natural infection by Anaplasma phagocytophilum in a dairy cattle herd in Brittany, France. Clinical Microbiology and Infection, 15(2): 24-25.
• ● Leatch, G. (1973). Preliminary studies on the transmission of Anaplasma marginale by Boophilus­microplus. Australian Veterinary Journal, 49(1): 16-19.
• ● Muhammad, S.S., Rao Muhammmad, S.S., Ahmad Khan, Z.I. and Muhammad, N.K. (2014). Prevalence and Risk Factors of Anaplasmosis in Cattle and Buffalo Populations of District Khanewal, Punjab, Pakistan. Global Veterinaria, 12(1): 146-153.
• ● Noaman, V. (2017) A review of anaplasmosis and the prevalence of Anaplasma marginale in cattle in Iran and the world. Veterinary Researches & Biological Products, 116(3): 2-15. [In Persian]
• ● Noaman, V. (2019). A review on Anaplasma phagocytophilum as a zoonotic agent. Tehran University Medical Journal, 76(12): 778-785. [In Persian]
• ● Noaman, V., Allameh, S.K. and Nabavi, R. (2017). Anaplasmosis in Ruminants of Iran: An Overview. Advanced Techniques in Clinical Microbiology, 1(2): 1-3.
• ● Noaman, V. and Moradi, M. (2019). Molecular epidemiology and risk factors assessment of Anaplasma spp. on dairy cattle in Southwest of Iran. Acta Veterinaria Eurasia, 45(1): 30-36.
• ● Noaman, V., Nabinejad, A., Shahmoradi, A. and Esmaeilkhanian, S. (2016). Molecular detection of bovine leukocytic Anaplasma species in Isfahan, Iran. Research in Molecular Medicine, 4(2): 47-51.
• ●Noaman, V. and Shayan, P. (2010). Comparison of Microscopy and PCR-RFLP for detection of Anaplasma marginale in carrier cattle. Iranian Journal of Microbiology, 2(2): 89-94.
• ● Ooshiro, M., Zakimi, S., Matsukawa, Y., Katagiri, Y. and Inokuma, H. (2008). Detection of Anaplasma bovis and Anaplasma phagocytophilum from cattle on Yonaguni Island, Okinawa, Japan. Veterinary Parasitology, 154(3-4): 360-364.
• ● Razmi, G.R., Dastjerdi, K., Hosseini, H., Naghibi, A., Barati, F. and Aslani, M.R. (2006). An epidemiological study on Anaplasma infection in cattle, sheep and goats in Mashhad suburb, Khorasan province, Iran. Annals of the New York Academy of Sciences, 1078(1): 479-481.
• ● Salehi-Guilandeh, S., Sadeghi-Dehkordi, Z., Sadeghi Nasab, A. and Yousefi, A. (2018). Molecular detection of Anaplasma spp. in cattle of Talesh County, North of Iran. Bulgarian Journal of Veterinary Medicine, 22(4): 457-465.
• ● Scharf, W., Schauer, S., Freyburger, F., Petrovec, M., Schaarschmidt- Kiener, D., Liebisch, G., et al. (2011). Distinct host species correlate with Anaplasma phagocytophilum ankA gene clusters. Journal of Clinical Microbiology, 49(3): 790-796.
• ● Stuen, S., Granquist, E.G. and Silaghi, C. (2013). Anaplasma phagocytophilum: a widespread multi-host pathogen with highly adaptive strategies. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 3(3): 31.
• ● Stuen, S., Pettersen, K.S., Granquist, E.G., Bergström, K., Bown­, K.J. and Birtles, R.J. (2013). Anaplasma phagocytophilum variants in sympatric red deer (Cervus elaphus) and sheep in southern Norway. Ticks and Tick Borne Disease, 4(3):197-201.
• ● Stuen S., Torsteinbo, W.O., Bergstrom, K. and Bardsen, K. (2009). Superinfection occurs in Anaplasma­phagocytophilum infected sheep irrespective of infection phase and protection status. Acta Veterinaria Scandinavica, 51(41): 1-6.
• ● Tay, S.T., Koh, F.X., Kho, K.L. and Ong, B.L. (2014). Molecular survey and sequence analysis of Anaplasma spp. in cattle and ticks in a Malaysian farm. Tropical Biomedicine, 31(4): 769-776.
• ● Torina, A. and Caracappa, S. (2007). Anaplasmosis in cattle in Italy. Veterinary Research Communications, 31(1): 73-78.
• ● Torina, A., Alongi, A., Naranjo, V., Scimeca, S., Nicosia, S., Di Marco, V., et al. (2008b). Characterization of Anaplasma infections in Sicily, Italy. Annals of the New York Academy of Sciences, 1149(1): 90-93.
• ●Torina, A., Galindo, R.C., Vicente, J., Di Marco, V., Russo, M., Aronica, V., et al. (2010). Characterization of Anaplasma phagocytophilum and A. ovis infection inanaturally infected sheep flock with poor health condition. Tropical Animal Health and Production, 42(7): 1327-31.
• ● Vahedi Noori, N. and Noaman, V. (2020). Molecular Identification of Anaplasma pathogenic species in Sheep in Mazandaran Province. Veterinary Researches & Biological Products, 33(2): 29-41. [In Persian]
• ●Weisburg, W.G., Barns, S.M., Pelletier, D.A. and Lane, D.J. )1991(. 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. Journal  of  Bacteriology, 173(2): 697-703.
• ● Yang, J., Liu, Z., Niu, Q., Liu, G., Han, R., Guan, G., et al. (2016). Anaplasma phagocytophilum in sheep and goats in central and southeastern China. Parasites and Vectors, 9(593): 1-7
• ●Yang, J., Liu, Z., Guan, G., Liu, Q., Li, Y., Chen, Z., et al. (2013). Prevalence of Anaplasma­phagocytophilum in ruminants, rodents and ticks in Gansu, North-Western China. Journal of Medical Microbiology, 62(2): 254-258.
• ●Yousefi, A., Rahbari, S., Shayan, P., Sadeghi-Dehkordi, Z. and Ahomar, A.B. (2017). Molecular evidence of Anaplasma phagocytophilum: An emerging tick-borne pathogen in domesticated small ruminant of Iran; first report. Comparative Clinical Pathology, 26(3): 637-642.