تعداد نشریات | 418 |
تعداد شمارهها | 10,004 |
تعداد مقالات | 83,629 |
تعداد مشاهده مقاله | 78,544,585 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 55,614,009 |
اثر متیل جاسمونات و استرادیول بر شاخصهای فیزیولوژیکی و خاصیت آنتیاکسیدانی گل داروئی همیشهبهار (Calendula officinalis L.) | ||
اکوفیزیولوژی و فیتوشیمی گیاهان دارویی و معطر | ||
دوره 9، شماره جدید 1، آبان 1401، صفحه 1-12 اصل مقاله (550.54 K) | ||
نوع مقاله: مقاله تحقیقاتی | ||
نویسندگان | ||
شهرام صداقت حور* ؛ فاطمه رئوف حق پرور | ||
گروه باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت، رشت، گیلان، ایران | ||
چکیده | ||
همیشه بهار (Calendula officinalis L.) از خانواده Asteraceae و گیاهی زینتی- داروئی زیبا با منشاء مدیترانه و غرب آسیا و اروپای مرکزی میباشد. به منظور بررسی اثر متیل جاسمونات و استرادیول بر شاخصهای رویشی و خاصیت آنتیاکسیدانی گل همیشه بهار، آزمایشی فاکتوریل بر پایه بلوکهای کامل تصادفی در بهار 1395، با دو فاکتور متیل جاسمونات در 4 غلظت (0، 10، 100 و 500 میکرومولار) و استرادیول در 4 سطح (0، 1، 5 و 10 میلیلیتر در گرم) در 3 تکرار در گلخانه دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت انجام شد. نتایج نشان داد که اثر ساده متیل جاسمونات در غلظتهای 10 و 500 میکرومولار به ترتیب بر صفات تعداد برگ، کلروفیل کل، کاروتنوئید گلبرگ و ظرفیت آنتیاکسیدانی بیشترین اثر را داشته است. همچنین، اثر ساده استرادیول در غلظتهای 10 و 5 میلیلیتر برگرم به ترتیب بر صفات تعداد برگ، وزن خشک، آنزیم پراکسیداز، فلاونویید طول موجهای 300 و330 نانومتر و آنتوسیانین، دارای بیشترین اثر بوده است. همچنین نتایج این آزمایش نشان داد که بیشترین تعداد برگ، بیشترین میزان کلروفیل a و b و آنزیم پراکسیداز تحت تیمار متیلجاسمونات 500 میکرومولار و استرادیول 10 میلیلیتر در گرم بهدست آمد. | ||
تازه های تحقیق | ||
نتایج بدست آمده از این آزمایش نشان داد که متیلجاسمونات در غلظتهای 10 و 500 میکرومولار و استرادیول در غلظتهای 5 و 10 میلیلیتر بر گرم بیشترین تأثیر را روی صفات اندازهگیری شده در این آزمایش داشته است. همچنین نتایج حاصل از اثر متقابل "متیلجاسمونات × استرادیول" نشان داد که بیشترین تعداد برگ، بیشترین میزان کلروفیل a، بیشترین میزان کلروفیل b و آنزیم پراکسیداز تحت تیمار متیلجاسمونات 500 میکرومولار و استرادیول 10 میلیلیتر بر گرم و بیشترین میزان ظرفیت آنتیاکسیدانی گیاه تحت تیمار متیلجاسمونات 500 میکرومولار و استرادیول 5 میلیلیتر بر گرم به دست آمد. | ||
کلیدواژهها | ||
همیشه بهار؛ متیل جاسمونات؛ استرادیول؛ آنتیاکسیدان؛ کاروتنوئید | ||
سایر فایل های مرتبط با مقاله
|
||
مراجع | ||
Addy, S. K. and Goodman, R. N. 1972. Polyphenol oxidase and peroxidase activity in apple leaves inoculated with a virulent or an avirulent strain of Erwinia amylovora, Indian Phytopathology, 25: 575-579. Babst, B. A., Ferrieri, R. A., Gray, D. W., Lerdau, M., Schlyer, D.J., Schueller, M., Thrope, M. R. and Orians, C. M. 2005. Jasmonic acid induces rapid changes in carbon transport and partitioning in Populus. New phytologist, 167: 63-72. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2005.01388.x Balbi, V., and Devoto, A. 2008. Jasmonate signaling network in Arabidopsis thaliana, crucial regulatory modes and new physiological scenarios, New phytologist, 171: 301-318. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137. 2007. 02292.x Clouse, S.D. 2019. Brassinosteroids. Reference Module in Biomedical Sciences, https://doi.org/10.1016/B978-0-12-801238-3.11363-7 Creelman, R.A. and Mullet, J.E. 1997. Biosynthesis and action of jasmonates in plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 48: 355 – 381. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.arplant. 48.1. 355 Dazy, M., Jung, V., Ferard, J. and Masfaraud, J. 2008. Ecological recovery of vegetation on a coke-factory soil: Role of plant antioxidant enzymes and possible implication in site restoration, Chemosphere, 74: 57-63. DOI: https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2008.09.014 Erdal, S., and Dumlupinar, R. 2011. Mammalian sex hormones stimulate antioxidant system and enhance growth of chickpea plants. Acta Physiologiae Plantarum, 33:1011–1017. DOI: https://doi.org/10.1007/s11738-010-0634-3 Farazi, E., Afshari, H. and Hokm Abadi, H. 2015. Effect of Different Concentrations of Brassinosteroid on Physiomorphological Chracteristics of Five Pistachio Genotypes (Pistacia Vera. L). Nuts, 6(2): 143-153. (In Persian) Ghosh, P.K., Ajay, Bandyopadhyay, K.K., Manna, M.C., Mandel, K.G., Misra, A.K. and Hati, K.M. 2004. Comparative effectiveness of cattle manure, poultry manure, phosphocompost and fertilizer-NPK on three cropping systems in vertisols of semi-arid tropics. Bioresource Technology, 95: 85-93. DOI: https://doi.org/ 10.1016/j.biortech.2004.02.012 Gong, Y., Liu, X., He, W.H., Xu, H.G., Yuan, F. and Gao, Y.X., 2012. Investigation into the antioxidant activity and chemical composition of alcoholic extracts from defatted marigold (Tagetes erecta L.) residue. Fitoterapia, 83: 481-489. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2011.12.013 Haubrick, L.L. and Assmann, S.M. 2006. Brassinosteroids and plant function: some clues, more puzzles. Plant, Cell and Environment, 29: 446-457. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2005.01481.x Hendrawati, O., Yao, Q., Kim, H.K., Linthorst, H.J.M., Erkelens, C., Lefeber, A.W.M., Choi, Y.H. and Verpoorte, R. 2006. Metabolic differentiation of Arabidopsis treated with methyl jasmonate using nuclear magnetic resonance spectroscopy, Plant Science, 170:1118–1124. DOI: https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2006.01.017 Huang, K.L., Miyajima, I., Okubo, H., Shen, T.M. and Huang, T.S. 2001. Flower colours and pigments in hybrid tuberose (Polianthes). Scientia Horticulturae, 88: 235-241. DOI: https://doi.org/10.1016/S0304-4238(00) 00213-2 Janeczko, A. 2000. Influence of selected steroids on plant physiological processes especially flowering induction. PhD Dissertation, Agricultural University, Krakow, Poland. Janeczko, A., Filek, W., Biesaga-Koscielniak, J., Marcinska, I. and Janeczko, Z. 2003. The influence of animal sex hormones on the induction of flowering in Arabidopsis thaliana: comparison with the effect of 24-epibrassinolide. Plant, Cell Tissue and Organ Culture, 72: 147-151. DOI: https://doi.org/10.1023/A: 1022291718398 Janeczko, A. and Skocczowski, A. 2005. Mammalian sex hormones in plants. Folia Histochemica ET Cytobiologica, 43(2): 71 – 79. Jason, J.G., Thomas, G.R. and Pharr, D.M. 2004. Photosynthesis, chlorophyll fluorescence, and carbohydrate content of illicum taxa grown under varied irradiance. The American Society for Horticultural Science, 129: 46-53. DOI: https://doi.org/10.21273/JASHS.129.1.0046 Jia, Z-S., Tang, M.C. and Wu J.M. 1999. The Determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry, 64: 555-559. Jung, S. 2004. Effect of chlorophyll reduction in Arabidopsis thaliana by methyl jasmonate or norflurazon on antioxidant systems. Journal of Plant Physiology and Biochemistry, 42: 231-255. DOI: https://doi.org/10. 1016/j.plaphy.2004.01.001 Keramat, B. and Daneshmand, F. 2012. Dual role of methyl jasmonate in physiological responses of soybea (Glycine max L.) plant. Plant Process and Function, 1(1): 25-37. http://jispp.iut.ac.ir/article-1-24-en.html. (In Persian) Krizek, D.T., Kramer, G.F., Upadyaya, A., Mireeki, R.M. 1993. UV-B response of cucumber seedlings grown under metal halide and high pressure sodium/deluxe lamps. Physiologia Plantarum, 88: 350-358. DOI: https://doi. org/10.1111/j.1399-3054.1993.tb05509.x Kumari, G.J., Reddy, A.M., Naik, S.T., Kumar, S.G., Prasanthi. J., Sriranganayakulu, G., Reddy, P.C. and, Sudhakar, C. 2006. Jasmonic acid induced changes in protein pattern, antioxidativeanzyme activities and Peraoxidase isozyme in Peanut seedlings. Biologia Plantarum, 50: 219-226. DOI: https://doi.org/10.1007/s10535-006-0010-8 Mazumdar, B.C. and Majumder, K. 2003. Methods on Physicochemical analysis of fruits. Daya Publishing House. Delhi, India: 137-138. Milic, B.L., Dilas, S.M. and Ganadanovic- Brunet J.M. 1998. Antioxidative activity of phenolic compounds on the metal-ion breakdown of lipid peroxidation system. Food Chemistry, 61: 443-447. DOI: https://doi.org/10. 1016/s0308-8146(97)00126-x Mudalige, R.G., Kuehnle, A.R. and Amore, T.D. 2003. Pigment distribution and epidermal cell shape in dendrobium species and hybrids. HortScience, 38: 573–577. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI.38.4.573 Norastehnia, A. and Nojavan-Asghari, M. 2006. Effects of methyl jasmonate on the enzymatic antioxidant defense system in maize seedlings subjected to paraquat. Asian Journal of Plant Sciences, 5: 17-23. DOI: https://doi. org/10.3923/ajps.2006.17.23 Omidbaigi, R. Sadrai Menjili, K. and Sefidkon, F. 2006. Effect of Sowing Dates in the Productivity of Fennel (Foeniculum vulgare) CV. Soroksari. Medicinal and Aromatic Plants Research, 21(4): 465-479. DOI: https://doi.org/10.22092/ijmapr.2006.115029. (In Persian) Ozdamir. F., Bor, M., Demiral, T. and Turkan, I. 2004. Effects of 24 – epibrassinolide on seed germination, seedling growth, lipid Peroxidation, proline content and antioxidative system of rice (Oriza sativa L.) under salinity stress. Plant growth Regulation, 42: 203 – 211. DOI: https://doi.org/10.1023/b:grow.0000026509.25995.13 Ramandeep, K.T. and Savage, P.G. 2005. Antioxidant activity in different fractions of tomatoes. Food Research International, 38: 487-494. Raouf Fard, F., Sharifi, M., Omidbaigi, R., Sefidkon, F., Behmanesh, M. and Ahmadi, N. 2014. Effect of methyl jasmonate on metabolic enzymes and phenolics, in Agastache foeniculum [Pursh] Kuntze. Medicinal and Aromatic Plants, 30(3): 361-369. (In Persian) Reyes, L. and Cisneros-Zevallos, F. 2003. Wounding stress increases the phenolic content and antioxidant capacity of purple flesh potatoes. Agriculture and Food Chemistry, 51: 5296-5300. DOI: https://doi.org/10.1021/ jf034213u Reyes-Díaz, M., Lobos, T., Cardemil, L., Nunes-Nesi, A., Retamales, J., Jaakola, L., Alberdi, M., Ribera-Fonseca, A. 2016. Methyl jasmonate: an alternative for improving the quality and health properties of fresh fruits. Molecules, 21(6): 567-575. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules21060567 Sestak, Z. 1996. Limitations for finding a linear relationship between chlorophyll content and photosynthetic activity. Biologia Plantarum, 8: 336-346. DOI: https://doi.org/10.1007/bf02930670 Shan, X., Zhang, Y., Peng, W., Wang, Z. and Xie, D. 2009. Molecular mechanism for jasmonate- induction of anthocyanin accumulation in Arabidopsis. Experimental Botany, 60: 3849-3860. DOI: https://doi.org/10. 1093/jxb/erp223 Shore, L.S., Gurevitz, M. and Shemesh, M. 1998. Estrogen as an environmental pollutant. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 51: 361-366. DOI:https://doi.org/10.1007/bf00201753 Wittmann, C., Aschan, G. and Pfanz, H. 2001. Leaf and twig photosynthesis if young beech (Fagus sylvatica) and aspen (Populus tremula) trees grown under different light regime. Basic and Applied Ecology, 2: 145-154. DOI: https://doi.org/10.1078/1439-1791-00047. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 182 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 235 |